Məlumat

Bitkidən kənar yetişməyə qarşı: hansı daha qidalı meyvə verir?

Bitkidən kənar yetişməyə qarşı: hansı daha qidalı meyvə verir?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Bir çox meyvə ya bitkiyə bağlandıqda, ya da bitkidən ayrıldıqdan sonra yetişə bilər. Hansı seçim daha qidalı meyvə verir? Başqa sözlə desək, meyvəni hələ yetişməmiş ikən dəyirsə, onun yetişməsini gözləsə, meyvəni götürməzdən əvvəl meyvənin yetişməsini gözləmək kimi qidalanma xüsusiyyətləri də olacaqmı?


Bitki üzərində yetişən meyvə ilə baqqaldakı rəfdə yetişən meyvə arasında qida fərqi varmı?

Bitkidən çoxlu meyvə banan, pomidor və avokado kimi "çiy" vəziyyətdə yığılır.

Meyvə hələ bitkiyə bağlanmış halda yetişsə, çoxlu qida dəyəri alırmı?

Yerli baqqalınızın rəfində yetişən yetişməmiş meyvə, hələ də öz bitkisinə bağlı halda yetişən meyvə qədər qida maddəsinə malik ola bilərmi?

Yetişmə zamanı bəzi əsas bitki bio:

Əksər meyvələr üçün yetişmə prosesi bitki hormonu etilen tərəfindən idarə olunur. Bu, meyvədə yetişməyə səbəb olan bir qazdır, eyni zamanda məsafələrdə hərəkət edə bilən yayılan bir siqnaldır. Məsələn, bəzi növlərdə yetişməmiş meyvələrlə birlikdə yetişmiş meyvələri qoyarsanız, yetişmiş meyvələr yaxınlıqdakı meyvələrin yetişməsinə səbəb olan etilen çıxaracaq.

İlk kommersiya GMO, etilen istehsalına mane olan antisens RNT quruluşu olan flavr-savr pomidoru idi. Pomidorların öz etilenini hazırlamasının qarşısını alaraq, istədiyiniz zaman etilen əlavə edərək yetişmə prosesinə nəzarət edə bilərsiniz. Flavr-savr kommersiya istehsalı üçün uyğun olmayan çeşiddə işlənib hazırlandığından uğursuz oldu. Azaldılmış etilen istehsalı o vaxtdan bəri əksər kommersiya növlərində yetişdirildi.

Yetişmə zamanı qida dəyişiklikləri çox mürəkkəbdir və işıq və temperatur da daxil olmaqla bir sıra amillərdən asılıdır. Bunun yetkin meyvə toxumasında baş verdiyini və bitkidən yetişə bilən yetkin meyvələrdə çox az floem fəaliyyətinin baş verdiyini başa düşmək vacibdir. Yetkin toxuma böyüməsə də, hələ də biokimyəvi olaraq fəaliyyət göstərir.

Mən bitkidən kənarda yetişmə ilə bağlı məsələyə birbaşa toxunan heç nə tapa bilmədim, lakin mənim meylim odur ki, bu fərq digər amillərlə müqayisədə minimaldır. Meyvənin yaşı və saxlandığı şərait (yüngül, temperatur) və ən çox bitkinin böyümək şəraiti və müxtəlifliyi ən böyük rol oynayacaq. Qidalanma fərqlərini axtarmaq istəsəm, axtarışımı yetişmə rejiminə deyil, müxtəlif çeşidlərə baxmağa yönəldərdim.

Pomidordan istifadə edərək, bitki üzərində yetişmiş meyvələr, demək olar ki, bütün şəkərləri və son 3 gündə bir çox flavonoidləri üzümdə toplayır. Beləliklə, kimsə qidalanmanın orada olub-olmadığını soruşduqda, mən dadın orada olub olmadığını soruşuram, çünki dad mövcud olduqda, qidalanma optimal olacaqdır.

Diqqət yetirin ki, yalnız yetişmə prosesindən daha çox yaxşı ətirli pomidor istehsal etmək üçün daha çox şey gedir. Nəhəng bir genetik komponent, torpağın qidalanma vəziyyəti və zərərverici/xəstəlik təzyiqi nəzərə alınmalıdır. Kommersiya pomidorları boulinq topu sərt, vahid ölçüdə, yüksək məhsuldar və yetişmək üçün bir etilen kamerasına qoymadan əvvəl 2000 mil məsafəyə daşınması ilə əlaqəli bir sıra digər xüsusiyyətlərə malik olmaq üçün hazırlanmışdır. Bunların hər hansı birində ləzzət harada idi?

Ümumi məlumat, mən yaşayış üçün tərəvəz şitilləri istehsal edirəm və əyləncə üçün pomidor tənqidçisiyəm. http://www.selectedplants.com/culture.htm və son bir neçə maddəni oxuyun.

Redaktə: Bananlar bitkinin yetişməsindən o qədər də çox ləzzət və qida itkisinə məruz qalmır. Digər tərəfdən pomidorlar güclə yetişdikdə çoxlu miqdarda karotenoidlər, flavonoidlər və uçucu maddələr itirirlər ki, bu da qida tərkibini və dadını əhəmiyyətli dərəcədə azaldır. Bir günortadan sonra maraqlı bir araşdırma oxumaq istəyirsinizsə, "Klee pomidor ləzzəti"-a baxın. Harri ən azı daha yaxşı pomidor yetişdirməyə çalışır, baxmayaraq ki, əksər kommersiya pomidorlarının boulinq topunun genetikasını nəzərə alaraq onun uğur qazanacağına əmin deyiləm.

Sonuncu abzas çox maarifləndirici idi. Məndə belə bir təəssürat yarandı ki, hələ də " üzümdən" olan bir çox meyvədə hələ də floem vasitəsilə ona çoxlu qida maddələri və şəkərlər daşınır və o, seçildikdə bu qabiliyyətini itirir və buna görə də dadı o qədər də yaxşı deyil.

Bilirəm ki, bəzi meyvələrdə, xüsusən də ananasda, bitkidən heç bir yetişmə baş verməyəcək. Buna görə də, meyvə nə qədər şirin və ya yetişmiş olsa da, seçildiyi zaman ən yaxşısı odur.

Məqalədə deyilir ki, flavr-savr hüceyrə divarlarında pektini parçalayan və pomidorun yumşalmasına səbəb olan poliqalakturonaza istehsal etməmək üçün hazırlanmışdır.

Normalda pomidor yetişməmişdən əvvəl yığılardı, çünki yetişməyə icazə verilsə, çox yumşaq olardı.

Həm də dəqiq yetişmə növündən asılı olacaq. Bəzi bitkilər nişastanı yetişməmiş meyvələrdə saxlayır və yetişmə prosesi nişastanı şəkərə çevirir, digərləri isə şəkəri başqa yerdə saxlayır və meyvənin içinə keçir. Beləliklə, birinci növ meyvələr seçildikdən sonra şirinləşə bilər, ikincisi isə yox. Məsələn, ananas kökündəki şəkəri kəsdiyi üçün yığdıqdan sonra daha şirin olmur.

Bunların heç biri ləzzət birləşmələri, hüceyrə divarının parçalanması və ya turşunun azalması kimi yetişmənin digər aspektlərinə aid deyil.

Mənim sahəm deyil, amma heç kim faktiki elmlə addım atmayıb, buna görə də tapa bildiyim iki mənbə var ki, bitkidə yetişmə ilə məhsuldan sonra yetişmə arasında fərqlər var, bunlardan biri antioksidant konsentrasiyasında, digəri isə antioksidant konsentrasiyasında fərq göstərir. Məhsuldan sonra ağacda yetişmə ilə daha ümumi fərq (və ya olmaması):

Mənbə 1 (aşağıdakı keçid) "Məlumatlar göstərir ki, yetişmə şəraiti həm antioksidant yığılma kinetikasına, həm də məhsuldan sonra yetişmiş meyvələrdə daha yüksək olan yekun məzmuna təsir edib."

Mənbə 2 "Adi müşahidə olunur ki, bir çox növlərin meyvələri yığıldıqda tez yetişir, lakin ağacda qaldıqda daha yavaş və ya ümumiyyətlə yetişmir. Bu davranışın ifrat halı Fuerte avokado (Cənubi Kaliforniyada yetişdirilir) ağaca sağlam bir gövdə ilə bağlandıqda yumşalmaz."

*Verdiyim hər hansı dezinformasiyaya görə üzr istəyirəm. Əvvəlki yazılarımın bağlantılarını və ifadələrimi izah edən hərtərəfli, qısa cavab yazmağa bir qədər vaxtım olana qədər postumu geri çəkmək istədim. Aşağıdakı bəzi digər yazıları oxumağınızı tövsiyə edirəm ki, hamısında müvafiq məlumatlar var, lakin suala tam cavab verdiyimə inanmıram. Verdiklərimi tam izah etməməyə meylim var. Buna görə də, hər birinizi təfərrüatlı şəkildə izah olunana qədər cavabımı aşağı səsləməyə dəvət edirəm.

Mən bir mənbə buraxmışam ki, bir neçə spesifik meyara baxanda əslində bitkidə yetişmiş pomidor ilə üzümdən kənarda yetişmiş pomidor arasında statistik əhəmiyyətli fərq olduğunu göstərir. (Cədvəl 1-də askorbin turşusunun səviyyəsini qeyd edin).

Bundan əlavə, bir fərqi göstərən oxşar tapıntıları göstərən başqa bir mənbə buraxdım. (Zəhmət olmasa, askorbin turşusunun səviyyəsinə diqqət yetirin) Cədvəl 6-da. Nəticələrdə qeyd etməklə yanaşı, fərqin əslində nə ola biləcəyini görmək üçün daha çox araşdırma aparılmalıdır.

Bununla belə, bu iki tədqiqat eyni test edilmiş dəyişənlərdən birinin (askorbin turşusunun səviyyələri) fərqli tapıntılarını göstərir. Birincidə askorbin turşusunda əhəmiyyətli dəyişiklik yoxdur, ikincisində isə. İki tədqiqat arasında bunu izah edə biləcək metod fərqləri var. Birinci tədqiqat həmçinin (bəzilərinin qeyd etdiyi kimi) 4 tədqiqat nöqtəsi ilə müqayisədə yetişmiş üzümlə müqayisədə 30%-ə qədər olan fərqləri göstərir.

Bunun əsas mahiyyətində. Bəli, BU BİR maddəyə, bir pomidora və sınaqdan keçirilmiş həmin xüsusi qida elementlərinə baxarkən ikisi arasında ölçülə bilən qida fərqi var. Mənim ilkin ifadəmin mərkəzində duran sual (yox, çox şey yoxdur). odur ki, qida fərqi o qədər kiçik olacaq ki, fərdin qidalanma rifahının sxemində fərq yaratmayacaq.

Bu, "qida fərqi" ifadəsinin əhəmiyyətini və onun nəyi nəzərdə tutduğunu necə şərh etmək məsələsidir. Buna görə üzr istəyirəm. Bununla belə, irəli sürülən bu narahatlıqları aradan qaldıracağam. Demək istərdim ki, pomidor tapıntıları fərqli olduğu üçün bu, mütləq bütün meyvələrə şamil ediləcəyi demək deyil.

Mən qidalanma öyrətmirəm, amma bu mövzunu genişləndirmək istərdim. Razıyam ki, yetişmə prosesinin özünün vacib olduğu heç nə eşitməmişəm.

Gördüklərim məhsul yığımından sonra zamanla qida maddələrinin itməsi ilə bağlı hesabatlardır. Bu, tez axtarışla tapa biləcəyim hesabatdır. Məndə belə bir təəssürat yarandı ki, ümumilikdə bu, yaxşı öyrənilməmişdir və qida saxlama elminin əksəriyyəti bunun əvəzinə qida təhlükəsizliyi ətrafında fırlanır.

Bunun sualınıza necə aidiyyatı odur ki, ərzaq mağazasında sizə iki ədəd ekvivalent yetişmiş meyvə təqdim edilsə və biri bitkidə, digəri isə rəfdə yetişibsə, o nəticəyə gəlmək olar ki, o, yetişib. bitki daha yaxınlarda seçildi və buna görə də qida profilinin çürüməsi üçün daha az vaxt var idi.

Bu 5 mənbədən heç biri sizin iddialarınızı dəstəkləmir. Sadəcə beşini oxudum. İkisi hətta məsələyə toxunmur, digər üçü (bunlardan biri yalnız uçan tülkülər tərəfindən yeyilən Samoa meyvələri haqqındadır) hamısı sizinlə ziddiyyət təşkil edir. Sizi iddialarınızı dəstəkləyən mənbələri dərc etməyə dəvət edirəm, əks halda yazınızı redaktə etmək istəyə bilərsiniz və ya öz mənbələri tərəfindən ziddiyyət təşkil etdiyi üçün silinə bilər.

Sitatlarınızın bölgüsü:

Birinci arayış - meyvənin qida tərkibinə heç bir aidiyyəti yoxdur, yalnız görünüşü və dadını müzakirə edir.

İkinci istinad - həqiqətən uçan tülkülər haqqındadır, lakin buna baxmayaraq, onların yetişməmiş və uçan tülkülər tərəfindən yeyilən yetişmiş meyvələr haqqında təqdim etdikləri məlumatlar bir fərq tapdı: yetişməmiş meyvələrdə yetişmiş meyvələrdən daha az dəmir və daha çox kalsium var. Tədqiq olunan beş bitki növünün heç biri insanlar tərəfindən kommersiya məqsədilə becərilmir, hamısı meyvə yarasaları tərəfindən yeyilən vəhşi Samoa növləridir.

3-cü ref - Bu kağız pomidor haqqındadır. Abstraktda deyilir: "Üzümdə yetişmiş pomidorlarda əhəmiyyətli dərəcədə daha çox likopen, beta-karotin, həll olunan və ümumi bərk maddələr var" (yəni, tədqiq edilmiş 5 qida komponentindən 4-ü). Onların cədvəlinə nəzər saldıqda aydın olur ki, likopen və beta-karotin fərqləri olduqca böyükdür, üzüm yetişmiş meyvələrdə təxminən 33% yüksəkdir.

4-cü rəy - Bu, C vitamini haqqındadır və sizinlə tamamilə ziddiyyət təşkil edir. Səh.211-də başlayan uzun müzakirə aydın göstərir ki, yığım vaxtı müxtəlif meyvə və tərəvəzlərdə C vitamini konsentrasiyasına əhəmiyyətli dərəcədə təsir göstərir. Məsələn: "Məhsul zamanı yetkinlik, yığım üsulu və məhsuldan sonrakı rəftar şərtləri də meyvə və tərəvəzin tərkibindəki C vitamininə təsir göstərir (Kader, 1988). Yetkinlik meyvə və tərəvəzin tərkib keyfiyyətini təyin edən əsas amillərdən biridir. Yaşıl şəkildə yığılmış və 20°C temperaturda süfrə yetişənə qədər yetişmiş pomidor meyvələrində süfrə yetişmə mərhələsində yığılanlara nisbətən daha az AA [askorbin turşusu, vitamin C] var idi (Kader et al., 1977). Betancourt et al. (1977) həmçinin bildirdi ki, 'qırıcı' mərhələdə təhlil edilən pomidor meyvələri, üzümdə süfrə qədər yetişənədək onların potensial AA konsentrasiyasının yalnız 69%-ni ehtiva edir. Meyvələr bitkidə və ya ondan kənarda yetişmə zamanı AA topladı, lakin bitkidə qalan meyvələrdə artım daha çox oldu."

5-ci istinad - Bu arayış yalnız üzvi və qeyri-üzvi qidalara aiddir, mən deyə bilərəm ki, orada üzüm yetişmiş və rəfdə yetişmiş meyvələr haqqında heç nə yoxdur.


Sizi maraqlandıran xəbərlər, kurslar və ya tədbirlərimiz olduqda bildiriş alın.

E-poçtunuzu daxil etməklə siz Penn State Extension-dan kommunikasiyalar almağa razılaşırsınız. Məxfilik siyasətimizə baxın.

Təqdim etdiyiniz üçün təşəkkür edirik!

Serb ladin - Picea omorika

Məqalələr

Ev bağbanı üçün meyvə istehsalı

Bələdçilər və Nəşrlər

Evin ərazisinin abadlaşdırılması

Bələdçilər və Nəşrlər

2019 Penn State Çiçək Sınaqları

Videolar

Bitki Həyat Dövrləri

Məqalələr

Cinsi Dəyişiklik

Maraqlıdır ki, erkək xurmaya “cins dəyişikliyi” verilə bilər və meyvə verə bilər. Peyvənd biletdir. Qışda “qızıl” ağacı tanınmış dişidən kəsilir və erkək fidana vurulur. Bundan sonra, kişi bazasından hər hansı bir böyümə yatırılır və qadın greftinin dominant olmasına icazə verilir. Nəticə erkək köklü ağac və xurma meyvəsi verən dişi tacıdır. Bunu etmək əslində o qədər də çətin deyil. Xurma peyvəndi üçün təlimatları burada tapa bilərsiniz.


Yığılmış Köklər

Dəyirmi, yaxşı formalı və çapıqlar, çatlar, çürüklər və ya sıyrıqlar olmayan kök yumruları seçin. Mümkün bakterial və ya göbələk infeksiyasını göstərən qaranlıq və ya yumşaq ləkələri olan hər hansı birini rədd edin.

Nə qədər ağır olduğunu qiymətləndirmək üçün kök yumrusunu əlinizə yığın, şirəli, xırtıldayan ət üçün bol su olmalıdır. Qırışmış və ya yumşaq bir görünüşə malik olanlar kimi azalmış daxili suyun göstəriciləri olan kök yumrularının üzərindən keçin.

Meyvənin nə qədər möhkəm olduğunu görmək və dərinin nə qədər sərt olduğunu qiymətləndirmək üçün barmaqlarınızla dərini hiss edin. Yumşaq qabığı olan və ya hamar və möhkəm olmayan meyvələrdən imtina edin.

Jicama asanlıqla soyulursa, iti bıçaqla soyun, o, yetkin və yeməyə hazırdır.


Adams DO, Yang SF (1979) Etilen biosintezi: metioninin etilenə çevrilməsində ara məhsul kimi 1-aminosiklopropan-1-karboksilik turşunun müəyyən edilməsi. Proc Natl Acad Sci USA 76:170–174

Adams-Phillips L, Barry C, Kannan P, Leclercq J, Bouzayen M, Giovannoni J (2004) Pomidorda CTR1 vasitəçiliyi ilə etilen siqnal ötürülməsinin üzvləri fərqli tənzimləyici xüsusiyyətlərə malik olan multigen ailəsi tərəfindən kodlaşdırıldığına dair sübut. Bitki Mol Biol 54:387–404

Adato A, Mandel T, Mintz-Oron S, Venger I, Levy D, Yativ M, Dominguez E, Wang Z, De Vos RCH, Jetter R, Schreiber L, Heredia A, Rogachev I, Aharoni A (2009) Meyvə səthi Pomidorda flavonoidlərin yığılması a SlMYB12-tənzimlənən transkripsiya şəbəkəsi. PLoS Genet 5: e1000777

Alba R, Payton P, Fei Z, McQuinn R, Debbie P, Martin GB, Tanksley SD, Giovannoni JJ (2005) Transkriptom və seçilmiş metabolit analizləri pomidor meyvələrinin inkişafı zamanı etilen nəzarətinin çoxlu nöqtələrini aşkar edir. Bitki Hüceyrəsi 17: 2954–2965

Atkinson RG, Bolitho KM, Wright MA, Iturriagagoitia-Bueno T, Reid SJ, Ross GS (1998) Apple ACC-oksidaz və poliqalakturonaza: transgenik pomidorda yetişmə spesifik gen ifadəsi və promotor analizi. Bitki Mol Biol 38:449–460

Atkinson RG, Gunaseelan K, Wang MY, Luo L, Wang T, Norling CL, Johnston SL, Maddumage R, Schröder R, Schaffer RJ (2011) Kividə klimakterik etilenin rolunun parçalanması (Actinidia chinensis) 1-aminosiklopropan-1-karboksilik turşu oksidaz yıxılma xətti ilə yetişmə. J Exp Bot 62:3821–3835

Ayub R, Guis M, Ben Amor M, Gillot L, Roustan JP, Latché A, Bouzayen M, Pech JC (1996) ACC oksidaz antisens geninin ifadəsi qovun qovun meyvələrinin yetişməsini maneə törədir. Nat Biotechnol 14:862–866

Baldwin EA, Scott JW, Shewmaker CK, Schuch W (2000) Flavor trivia və pomidor aroması: biokimya və mühüm aroma komponentlərinə nəzarət üçün mümkün mexanizmlər. HortScience 35:1013–1022

Ballester AR, Molthoff J, de Vos R, Hekkert BT, Orzaez D, Fernández-Moreno JP, Tripodi P, Grandillo S, Martin C, Heldens J, Ykema M, Granell A, Bovy A (2010) Çəhrayı rəngin biokimyəvi və molekulyar analizi pomidor: SlMYB12 transkripsiya faktorunu kodlayan genin tənzimlənməmiş ifadəsi çəhrayı pomidor meyvəsinin rənginə gətirib çıxarır. Bitki Physiol 152:71-84

Bapat VA, Trivedi PK, Ghosh A, Sane VA, Ganapathi TR, Nath P (2010) Ətli meyvələrin yetişməsi: molekulyar anlayış və etilenin rolu. Biotechnol Adv 28:94–107

Barry CS, Giovannoni JJ (2006) Pomidorda yetişmə yaşıl-yetişmiş mutant, etilen siqnalını pozan zülalın ektopik ifadəsi ilə inhibə edilir. Proc Natl Acad Sci USA 103:7923–7928

Barry CS, Blume B, Bouzayen M, Cooper W, Hamilton AJ, Grierson D (1996) Pomidorun 1-aminosiklopropan-1-karboksilat oksidaz gen ailəsinin diferensial ifadəsi. Bitki J 9:525–535

Barry CS, McQuinn RP, Thompson AJ, Seymour GB, Grierson D, Giovannoni JJ (2005) Etilen həssaslığı Yaşıl-yetişmişHeç vaxt-yetişmiş 2 pomidorun yetişən mutantları. Bitki Physiol 138:267–275

Barry C, McQuinn R, Chung M, Besuden A, Giovannoni J (2008) STAY-GREEN (SGR) zülalının homoloqlarında amin turşusu əvəzetmələri pomidor və bibərin yaşıl ət və xlorofil saxlayan mutasiyalarına cavabdehdir. Bitki Physiol 147:179–187

Barry CS, Aldridge GM, Herzog G, Ma Q, McQuinn RP, Hirschberg J, Giovannoni JJ (2012) Dəyişmiş xloroplast inkişafı və gecikmiş meyvə yetişməsi sink metaloproteazda mutasiyalar nəticəsində lütessensiya 2 pomidorun yeri. Bitki Physiol 159:1086–1098

Belding RD, Blankenship SM, Young E, Leidy RB (1998) Alma sortlarında epikutikulyar mumların tərkibi və dəyişkənliyi. J American Society for Hort Sci 123:348-356

Bemer M, Karlova R, Ballester AR, Tikunov YM, Bovy AG, Wolters-Arts M, Rossetto Pde B, Angenent GC, de Maagd RA (2012) Pomidor MƏHƏRLİ homologlar TDR4/FUL1MBP7/FUL2 meyvə yetişməsinin etilendən asılı olmayan aspektlərini tənzimləyir. Bitki Hüceyrəsi 24:4437–4451

Blackman FF, Parija P (1928) Bitki tənəffüsündə analitik tədqiqatlar. I. Qocalmış yetişən alma populyasiyasının tənəffüsü. Proc R Soc (Lond) B 103:412–445

Borovsky Y, Paran I (2008) Xlorofil tutucu mutasiyada bibər meyvəsinin yetişməsi zamanı xlorofilin parçalanması qocalma ilə induksiya olunan qalmaq-yaşıl geninin homoloqunda pozulur. Theor Appl Genet 117:235–240

Broun P (2005) Flavonoid biosintezinin transkripsiya nəzarəti: müxtəlifliyin müxtəlif aspektlərində iştirak edən konservləşdirilmiş tənzimləyicilərin kompleks şəbəkəsi Ərəbidopsis. Curr Op Plant Biol 8:272–279

Brummell DA (2006) Meyvələrin yetişməsində hüceyrə divarının sökülməsi. Funct Plant Bio 33:103–119

Brummell DA, Harpster MH (2001) Meyvələrin yumşaldılmasında və keyfiyyətində hüceyrə divarının metabolizması və transgen bitkilərdə onun manipulyasiyası. Bitki Mol Biol 47:311–340

Brummell DA, Harpster MH, Civello PM, Palys JM, Bennett AB, Dunsmuir P ​​(1999). Bitki Hüceyrəsi 11:2203–2216

Buchanan-Wollaston V (2007) Bitkilərdə qocalma. eLS. doi: 10.1002/9780470015902.a0020133

Butelli E, Titta L, Giorgio M, Mock HP, Matros A, Peterek S, Schijlen EG, Hall RD, Bovy AG, Luo J, Martin C (2008) Seçilmiş transkripsiya faktorlarının ifadəsi ilə pomidor meyvəsinin sağlamlığı təşviq edən antosiyaninlərlə zənginləşdirilməsi . Nat Biotechnol 26:1301–1308

Buttery RG (1993) Pomidor və digər tərəvəz və meyvələrin ləzzətinin kəmiyyət və sensor aspektləri. In: Acree TE, Teranishshi R (eds) Dad elmi: həssas prinsiplər və üsullar. Amerika Kimya Cəmiyyəti, Vaşinqton, s. 259-286

Buttery RG, Ling LC (1993) Pomidor meyvə və bitki hissələrinin uçucu komponentləri: əlaqə və biogenez. ACS Symp Ser 525:23–34

Carpita NC, Gibeaut DM (1993) Çiçəkli bitkilərdə ilkin hüceyrə divarlarının struktur modelləri: böyümə zamanı divarların fiziki xüsusiyyətləri ilə molekulyar quruluşun uyğunluğu. Bitki J 3:1–30

Cevik V, Ryder CD, Popovich A, Manning K, King GJ, Seymour GB (2010) MƏHVƏLƏ bənzər gen almada meyvə ətinin möhkəmliyi üçün genetik variasiya ilə əlaqələndirilir.Malus domestica Borkh.). Ağacın Genetik Genomları 6:271–279

Chen YF, Randlett MD, Findell JL, Schaller GE (2002) ETR1 etilen reseptorunun endoplazmik retikulumda lokallaşdırılması. Ərəbidopsis. J Biol Chem 277: 19861–19866

Chen G, Hackett R, Walker D, Talor A, Lin Z, Grierson D (2004) Yağ turşularından əldə edilən ləzzət birləşmələrinin yaranmasında iştirak edən pomidor lipoksigenazının (TomloxC) xüsusi izoformunun müəyyən edilməsi. Bitki Physiol 136:2641–2651

Che-Radziah CMZ, Nurul-Shahnadz AH, Nairatul-Ain AN, Zainal Z (2011) Antisens ACC oksidazın genetik transformasiyası Karika papaya L. cv Sekaki hissəciklərin bombardmanı vasitəsilə. Malays Appl Biol 40:39–45

Chung M, Vrebalov J, Alba R, Lee J, McQuinn R, Chung JD, Klein P, Giovannoni J (2010) A pomidor (Solanum lycopersicum) APETALA2/ERF gen, SlAP2a, meyvə yetişməsinin mənfi tənzimləyicisidir. Bitki J 64:936–947

Cin V, Tieman DM, Tohge T, McQuinn R, de Vos RC, Osorio S, Schmelz EA, Taylor MG, Smits-Kroon MT, Schuurink RC, Haring MA, Giovannoni J, Fernie AR, Klee HJ (2010) İdentifikasiya pomidor meyvəsində MYB transkripsiya faktorunun ektopik ifadəsi ilə fenilalanin metabolik yolunda genlərin. Bitki Hüceyrəsi 23: 2738–2753

Cunningham FX Jr, Pogson B, Sun Z, McDonald KA, DellaPenna D, Gantt E (1996) B və e likopen siklaza fermentlərinin funksional analizi Ərəbidopsis siklik karotenoid əmələ gəlməsinə nəzarət mexanizmini ortaya qoyur. Bitki Hüceyrəsi 8: 1613–1626

Davidovich-Rikanati R, Sitrit Y, Tadmor Y, Iijima Y, Bilenko N, Bar E, Carmona B, Fallik E, Dudai N, Simon JE, Pichersky E, Lewinsohn E (2007) Erkən plastidialın dəyişdirilməsi ilə pomidor ləzzətinin zənginləşdirilməsi terpenoid yolu. Nat Biotech 25:899–901

DeFillipi BG, Manriquez D, Luengwilai K, Gonzalez-Aguero M (2009) Aroma uçucu maddələr: meyvələrin yetişməsi zamanı biosintez və modulyasiya mexanizmləri. Adv Bot Res 50:1–37

Dong H, Deng Y, Mu J, Lu Q, Wang Y, Xu Y, Chu C, Chong K, Lu C, Zuo J (2007) Ərəbidopsis Spontan Hüceyrə Ölümü 1 karotenoid biosintezi üçün vacib olan z-karoten desaturazanı kodlayan gen xloroplastın inkişafında, fotomühafizədə və retrograd siqnalda iştirak edir. Nat Cell Res 17:458–470

Egea I, Barsan C, Bian W, Purgatto E, Latche A, Chervin C, Bouzayen M, Pech J-C (2010) Xromoplastların fərqliləşdirilməsi: cari vəziyyət və perspektivlər. Bitki Hüceyrəsinin Physiol 51:1601-1611

Elitzur T, Vrebalov J, Giovannoni JJ, Goldschmidt EE, Friedman H (2010) Bananın yetişməsi zamanı MADS qutusu gen ifadəsinin tənzimlənməsi və onların etilenlə tənzimləyici qarşılıqlı əlaqəsi. J Exp Bot 61:1523–1535

Espley RV, Hellens RP, Putterill J, Stevenson DE, Kutty-Amma S, Allan AC (2007) Alma meyvəsindəki qırmızı rəng MYB transkripsiya faktorunun, MdMYB10-un fəaliyyəti ilə bağlıdır. Bitki J 49:414–427

Espley RV, Brendolise C, Chagne D, Kutty-Amma S, Green S, Volz R, Putterill J, Schouten HJ, Gardiner SE, Hellens RP, Allan AC (2009) Promotor seqmentinin çoxsaylı təkrarları qırmızı almalarda transkripsiya faktorunun avtoregulyasiyasına səbəb olur. . Bitki Hüceyrəsi 21:168–183

Fray RG, Grierson D (1993) Pomidorun normal və mutant fitoen sintaza genlərinin ardıcıllıq, tamamlama və birgə bastırma yolu ilə identifikasiyası və genetik analizi. Bitki Mol Biol 22:589–602

Fujisawa M, Nakano T, Ito Y (2011) Xromatin immunopresipitasiyası ilə pomidor meyvəsinin yetişməsi tənzimləyicisi RIN üçün potensial hədəf genlərinin müəyyən edilməsi. BMC Bitki Biol 11:26

Gagne JM, Smalle J, Gingerich DJ, Walker JM, Yoo SD, Yanagisawa S, Vierstra RD (2004) Ərəbidopsis EIN3-ə bağlanan F-qutu 1 və 2, etilenin təsirini basdıran və EIN3 deqradasiyasını istiqamətləndirərək böyüməni təşviq edən ubiquitin-protein ligazaları əmələ gətirir. Proc Natl Acad Sci USA 101:6803–6808

Galpaz N, Ronen G, Khalfa Z, Zamir D, Hirschberg J (2006) Pomidorun klonlanması ilə xromoplasta xas karotenoid biosintetik yol aşkar edilir. -çiçək yer. Bitki Hüceyrəsi 18: 1947–1960

Gan S, Amasino RM (1995) Sitokinin avtorequlyasiyası ilə yarpaq qocalmasının qarşısının alınması. Elm 270:1986–1988

Garcia-Limones C, Schnabele K, Blanco-Portales R, Bellido ML, Caballero JL, Schwab W, Munoz-Blanco J (2008) Funksional xarakteristikası FaCCD1: çiyələkdən alınan karotenoid parçalanma dioksigenazı meyvələrin yetişməsi zamanı luteinin parçalanmasında iştirak edir. J Agric Food Chem 56:9277–9285

Giovannoni JJ (2007) Meyvə yetişən mutantlar yetişmə nəzarətinə dair fikirlər verir. Curr Opin Plant Biol 10:283–289

Giovannoni JJ, DellaPenna D, Bennett AB, Fischer RL (1989) Transgenikdə kimerik poliqalakturonaza geninin ifadəsi rin (yetişmə inhibitoru) pomidor meyvəsi poliuronidin deqradasiyası ilə nəticələnir, lakin meyvənin yumşalmasına səbəb olmur. Bitki Hüceyrəsi 1:53–63

Girard AL, Mounet F, Lemaire-Chamley M, Gaillard C, Elmorjani K, Vivancos J, Runavot J-L, Quemener B, Petit J, Germain V, Rothan C, Marion D, Bakan B (2012) Pomidor GDSL1 meyvə kutikulunda kütinin çökməsi üçün tələb olunur. Bitki Hüceyrəsi 24:3106–3121

Goulao LF, Oliveira CM (2007) Meyvə yetişmə zamanı hüceyrə divarının modifikasiyası: meyvə meyvə olmadıqda. Trends Food Sci Technol 19:4–25

Goulet C, Mageroy MH, Lam N, Floystad A, Tieman DM, Klee HJ (2012) Pomidor qabığında ləzzət dəyişkənliyində esterazanın rolu. Proc Natl Acad Sci USA 109:19009–19014

Guo H, Ecker JR (2003) Etilen qazına bitki reaksiyaları EIN3 transkripsiya faktorunun SCF (EBF1/EBF2)-dan asılı proteolizi ilə vasitəçilik edir. Hüceyrə 115:667–677

Guo Y, Gan S (2006) NAC ailəsinin transkripsiya faktoru olan AtNAP yarpaq qocalmasında mühüm rola malikdir. Bitki J 46:601–612

Hamilton AJ, Lycett GW, Grierson D (1990) Transgenik bitkilərdə etilen hormonunun sintezini maneə törədən antisens geni. Təbiət 346:284–287

Hancock RD, Viola R (2005) Bitkilərdə L-askorbin turşusunun biosintezi və katabolizmi. Crit Rev Plant Sci 24:167–188

Hileman L, Sundstrom J, Litt A, Chen M, Shumba T, Irish V (2006) Pomidorda MADS-box gen ailəsinin molekulyar və filogenetik analizləri. Mol Biol Evol 23:2245–2258

Hirschberg J (2001) Çiçəkli bitkilərdə karotenoid biosintezi. Curr Opin Bitki Biol 4:210–218

Hovav R, Chehanovsky N, Moy M, Jetter R, Schaffer AA (2007) Solanum təkamülü zamanı susdurulmuş bir genin (Cwp1) identifikasiyası, pomidor meyvəsində ifadə edildikdə kutikulun mikrofissurasiyasına və susuzlaşmasına səbəb olur. Bitki J 52:627–639

Ioannidi E, Kalamaki MS, Mühəndis C, Pateraki I, Alexandrou D, Mellidou I, Giovannoni JJ, Kanellis AK (2009) Pomidor meyvələrinin inkişafı və yetişməsi zamanı və stress şəraitinə cavab olaraq askorbin turşusu ilə əlaqəli genlərin ifadə profili. J Exp Bot 60:663–678

Isaacson T, Ronen G, Zamir D, Hirschberg J (2002) Klonlama naringi pomidordan bitkilərdə b-karotin və ksantofillərin istehsalı üçün vacib olan karotenoid izomeraza aşkar edilir. Bitki Hüceyrəsi 14:333–342

Isaacson T, Kosma DK, Matas AJ, Buda GJ, He Y, Yu B, Pravitasari A, Batteas JD, Stark RE, Jenks MA, Rose JKC (2009). xüsusiyyətləri, lakin transpirasiya su itkisi deyil. Bitki J 60:363–377

Itai A, Ishihara K, Bewley JD (2003) Beta-D-ksilosidaza və alfa-L-arabinofuranosidazanın ifadəsi və klonlanmasının xarakteristikası pomidorun inkişafı və yetişməsi (Lycopersicon esculentum dəyirman.) meyvə. J Exp Bot 54:2615–2622

Itkin M, Seybold H, Breitel D, Rogachev I, Meir S, Aharoni A (2009) Pomidor AGAMOUS-LİKE 1 meyvə yetişmə tənzimləyici şəbəkəsinin tərkib hissəsidir. Bitki J 60:1081–1095

İto Y, Kitagava M, İhaşi N, Yabe K, Kimbara J, Yasuda J, İto H, İnakuma T, Hiroi S, Kasumi T (2008) DNT-ni bağlayan spesifiklik, transkripsiya aktivləşdirmə potensialı və rin pomidor meyvələrinin yetişmə tənzimləyicisi RIN üçün mutasiya effekti. Bitki J 55:212–223

Jaakola L, Poole M, Jones MO, Kämäräinen-Karppinen T, Koskimäki JJ, Hohtola A, Haggman H, Fraser PD, Manning K, King GJ, Thomson H, Seymour GB (2010) A SQUAMOSA MADS qutusu qaragilə meyvələrində antosiyanin yığılmasının tənzimlənməsində iştirak edən gen. Bitki Physiol 153: 1619–1629

Kamiyoshihara Y, Tieman DM, Huber DJ, Klee HJ (2012) Pomidor meyvəsindəki etilen reseptorlarının fosforlaşma vəziyyətində liqanda səbəb olan dəyişikliklər. Bitki Physiol 160:488–497

Karlova R, Rosin FM, Busscher-Lange J, Parapunova V, Do PT, Fernie AR, Fraser PD, Baxter C, Angenent GC, de Maagd RA (2011) Transkriptom və metabolit profili göstərir ki, APETALA2a pomidor meyvələrinin yetişməsinin əsas tənzimləyicisidir. Bitki Hüceyrəsi 23:923–941

Kerstiens G (1996) Kutikulyar su keçiriciliyi və onun fizioloji əhəmiyyəti. J Exp Bot 47:1813–1832

Kevany B, Tieman DM, Taylor M, Dal Cin V, Klee H (2007) Etilen reseptorunun deqradasiyası pomidor meyvələrində yetişmə vaxtına nəzarət edir. Bitki J 51:458–567

Kevany BM, Taylor MG, Klee HJ (2008) Etilen reseptorunun meyvəyə xüsusi bastırılması LeETR4 erkən yetişən pomidor meyvəsi ilə nəticələnir. Bitki Biotexnol J 6:295–300

Klee HJ (2004) Etilen siqnal ötürülməsi. Həddindən artıq hərəkət Ərəbidopsis. Bitki Physiol 135:660–667

Klee HJ (2010) Təzə meyvələrin ləzzətinin yaxşılaşdırılması: genomika, biokimya və biotexnologiya. Yeni Fitol 187:44–56

Klee HJ, Giovannoni JJ (2011) Pomidor meyvələrinin yetişməsinin genetikası və nəzarəti və keyfiyyət xüsusiyyətləri. Annu Rev Genet 45:41-59

Klee HJ, Hayford MB, Kretzmer KA, Barry GF, Kishore GM (1991) Transgenik pomidor bitkilərində bakterial fermentin ifadəsi ilə etilen sintezinə nəzarət. Bitki Hüceyrəsi 3: 1187–1194

Kosma DK, Parsons EP, Isaacson T, Lu S, Rose JKC, Jenks MA (2010) Pomidor yetişən mutantlarda inkişaf zamanı meyvənin kütikül lipid kompozisiyaları. Fiziol Bitkisi 139:107–117

Kou X, Watkins CB, Gan SS (2012) Ərəbidopsis AtNAP meyvələrin qocalmasını tənzimləyir. J Exp Bot 63:6139–6147

Kovacs K, Fray RG, Tikunov Y, Graham N, Bradley G, Seymour GB, Bovy AG, Grierson D (2009) Pleiotropik yetişmə mutasiyalarının ləzzət uçucu biosintezinə təsiri. Fitokimya 70:1003–1008

Kumar R, Sharma MK, Kapoor S, Tyagi AK, Sharma AK (2012) Transkriptom təhlili rin mutant meyvə və siliko analizində diferensial şəkildə tənzimlənən genlərin promotorları haqqında fikir verir LeMADS-RIN-pomidorda yetişmənin etilendən asılı, eləcə də etilendən asılı olmayan aspektləri tənzimlənir. Mol Genet Genomics 287:189–203

Laguna L, Casado CG, Heredia A (1998) 3 H-fenilalanin sələfinin in vivo daxil edilməsindən sonra pomidor meyvəsinin kütiküllərində flavonoid biosintezi. Physiol Plant 105:491–498

Leclercq J, Adams-Phillips L, Zegzouti H, Jones B, Latche A et al (2002) LECTR1, pomidor CTR1-gen kimi, etilen siqnal vermə qabiliyyətini nümayiş etdirir Ərəbidopsis və pomidorda yeni ifadə nümunələri. Bitki Physiol 130:1132–1142

Lee JM, Joung JG, McQuinn R, Chung MY, Fei Z, Tieman D, Klee H, Giovannoni J (2012) Pomidor meyvəsində kombinə edilmiş transkriptom, genetik müxtəliflik və metabolit profili etilen reaksiya faktorunu ortaya qoyur. SlERF6 yetişmədə və karotenoidlərin yığılmasında mühüm rol oynayır. Bitki J 70:191–204

Lewinsohn E, Sitrit Y, Bar E, Azulay Y, Meir A, Zamir D, Tadmor Y (2005a) Karotenoid piqmentasiyası, müqayisəli genetik analizlə aşkar edildiyi kimi, pomidor və qarpız meyvələrinin uçucu tərkibinə təsir göstərir. J Agric Food Chem 53:3142–3148

Lewinsohn E, Sitrit Y, Bar E, Azulay Y, Ibdah M, Meir A, Yosef E, Zamir D, Tadmor Y (2005b) Yalnız rənglər deyil - pomidor və qarpız meyvələrində piqmentasiya və aroma arasında əlaqə kimi karotenoid deqradasiyası. Trends Food Sci Technol 16:407–415

Li F, Murillo C, Wurtzel ET (2007) Qarğıdalı Y9 15-cis-z-karotenin izomerləşməsi üçün vacib olan məhsulu kodlayır. Bitki Physiol 144:1181–1189

Lin Z, Arciga-Reyes L, Zhong S, Alexander L, Hackett R, Wilson I, Grierson D (2008a) SlTPR1, pomidor tetratrikopeptidi təkrar zülalı, etilen reseptorları NR və LeETR1 ilə qarşılıqlı əlaqədə olur, etilen və auksin reaksiyalarını və inkişafı modulyasiya edir. J Exp Bot 59:4271–4287

Lin Z, Hong Y, Yin M, Li C, Zhang K, Grierson D (2008b) Pomidor HD-zip homeobox proteini LeHB-1, çiçək orqanogenezində və yetişməsində mühüm rol oynayır. Bitki J 55:301–310

Lin Z, Zhong S, Grierson D (2009) Etilen tədqiqatında son nailiyyətlər. J Exp Bot 60:3311–3336

Luque P, Bruque S, Heredia A (1995) Water permeability of isolated cuticular membranes: a structural analysis. Arch Biochem Biophys 317:417–422

Manning K, Tor M, Poole M, Hong Y, Thompson AJ, King GJ, Giovannoni JJ, Seymour GB (2006) A naturally occurring epigenetic mutation in a gene encoding an SPB-box transcription factor inhibits tomato fruit ripening. Nat Genet 38:949–952

Marín-Rodríguez MC, Orchard J, Seymour GB (2002) Pectate lyases, cell wall degradation and fruit softening. J Exp Bot 53:2115–2119

Martel C, Vrebalov J, Tafelmeyer P, Giovannoni JJ (2011) The tomato MADS-box transcription factor RIPENING INHIBITOR interacts with promoters involved in numerous ripening processes in a COLORLESS NONRIPENING-asılı şəkildə. Plant Physiol 157:1568–1579

Matas AJ, Gapper NE, Chung MY, Giovannoni JJ, Rose JK (2009) Biology and genetic engineering of fruit maturation for enhanced quality and shelf-life. Curr Opin Biotechnol 20:197–203

Matas AJ, Yeats TH, Buda GJ, Zheng Y, Chatterjee S, Tohge T, Ponnala L, Adato A, Aharoni A, Stark R, Fernie AR, Fei Z, Giovannoni JJ, Rose JK (2011) Tissue- and cell-type specific transcriptome profiling of expanding tomato fruit provides insights into metabolic and regulatory specialization and cuticle formation. Plant Cell 23:3893–3910

Mathieu S, Dal Cin V, Fei Z, Li H, Bliss P, Taylor M, Klee H, Tieman D (2009) Flavor compounds in tomato fruits: identification of loci and potential pathways affecting volatile composition. J Exp Bot 60:325–337

Matthews PD, Luo RB, Wurtzel ET (2003) Maize phytoene desaturase and z-carotene desaturase catalyze a poly-Z desaturation pathway: implications for genetic engineering of carotenoid content among cereal crops. J Exp Bot 54:2215–2230

McMurchie EJ, McGlasson WB, Eaks IL (1972) Treatment of fruit with propylene gives information about the biogenesis of ethylene. Nature 237:235–236

Miao Y, Zentgraf U (2007) The antagonist function of Ərəbidopsis WRKY53ESR/ESP in leaf senescence is modulated by the jasmonic and salicylic acid equilibrium. Plant Cell 19:819–830

Mintz-Oron S, Mandel T, Rogachev I, Feldberg L, Lotan O, Yativ M, Wang Z, Jetter R, Venger I, Adato A, Aharoni A (2008) Gene expression and metabolism in tomato fruit surface tissues. Plant Physiol 147:823–851

Mohorianu I, Schwach F, Jing R, Lopez-Gomollon S, Moxon S, Szittya G, Sorefan K, Moulton V, Dalmay T (2011) Profiling of short RNAs during fleshy fruit development reveals stage-specific sRNAome expression patterns. Plant J 67:232–246

Moxon S, Jing R, Szittya G, Schwach F, Rusholme Pilcher RL, Moulton V, Dalmay T (2008) Deep sequencing of tomato short RNAs identifies microRNAs targeting genes involved in fruit ripening. Genome Res 18:1602–1609

Muir SR, Collins GJ, Robinson S, Hughes S, Bovy A, De Vos RCH, van Tunen AJ, Verhoeyen ME (2001) Overexpression of petunia chalcone isomerase in tomato results in fruit containing increased levels of flavonols. Nat Biotechnol 19:470–474

Nakatsuka A, Murachi S, Okunishi H, Shiomi S, Nakano R, Kubo Y, Inaba A (1998) Differential expression and internal feedback regulation of 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase, 1-aminocyclopropane-1-carboxylate oxidase, and ethylene receptor genes in tomato fruit during development and ripening. Plant Physiol 118:1295–1305

Nashilevitz S, Melamed-Bessudo C, Izkovich Y, Rogachev I, Osorio S, Itkin M, Adato A, Pankratov I, Hirschberg J, Fernie AR, Wolf S, Usadel B, Levy AA, Rumeau D, Aharoni A (2010) An orange ripening mutant links plastid NAD(P)H dehydrogenase complex activity to central and specialized metabolism during tomato fruit maturation. Plant Cell 22:1977–1997

Oeller PW, Wong LM, Taylor LP, Pike DA, Theologis A (1991) Reversible inhibition of tomato fruit senescence by antisense RNA. Science 254:437–439

O’Malley RC, Rodriguez FI, Esch JJ, Binder BM, O’Donnell P, Klee HJ, Bleecker AB (2005) Ethylene-binding activity, gene expression levels, and receptor system output for ethylene receptor family members from Ərəbidopsis and tomato. Plant J 41:651–659

Osorio S, Alba R, Damasceno CM, Lopez-Casado G, Lohse M, Zanor MI, Tohge T, Usadel B, Rose JK, Fei Z, Giovannoni JJ, Fernie AR (2011) Systems biology of tomato fruit development: combined transcript, protein, and metabolite analysis of tomato transcription factor (nə də, rin) and ethylene receptor (Nr) mutants reveals novel regulatory interactions. Plant Physiol 157:405–425

Pan IL, McQuinn R, Giovannoni JJ, Irish VF (2010) Functional diversification of AGAMOUS lineage genes in regulating tomato flower and fruit development. J Exp Bot 61:1795–1806

Pan Y, Bradley G, Pyke K, Ball G, Lu C, Fray R, Marshall A, Jayasuta S, Baxter C, van Wijk R, Boyden L, Cade R, Chapman NH, Fraser PD, Hodgman C, Seymour GB (2013) Network inference analysis identifies an APRR2-like gene linked to pigment accumulation in tomato and pepper fruits. Plant Physiol 161:1476–1485

Peschel S, Franke R, Schreiber L, Knoche M (2007) Composition of the cuticle of developing sweet cherry fruit. Phytochemistry 68:1017–1025

Picton S, Barton SL, Bouzayen M, Hamilton AJ, Grierson D (1993) Altered fruit ripening and leaf senescence in tomatoes expressing an antisense ethylene-forming enzyme transgene. Plant J 3:469–481

Pirrello J, Jaimes-Miranda F, Sanchez-Ballesta MT, Tournier B, Khalil-Ahmad Q, Regad F, Latche A, Pech JC, Bouzayen M (2006) Sl-ERF2, a tomato ethylene response factor involved in ethylene response and seed germination. Plant Cell Physiol 47:1195–1205

Pnueli L, Hareven D, Rounsley SD, Yanofsky MF, Lifschitz E (1994) Isolation of the tomato AGAMOUS gen TAG1 and analysis of its homeotic role in transgenic plants. Plant Cell 6:163–173

Potuschak T, Lechner E, Parmentier Y, Yanagisawa S, Grava S, Koncz C, Genschik P (2003) EIN3-dependent regulation of plant ethylene hormone signaling by two Ərəbidopsis F box proteins: EBF1 and EBF2. Cell 115:679–689

Powell AL, Nguyen CV, Hill T, Cheng KL, Figueroa-Balderas R, Aktas H, Ashrafi H, Pons C, Fernández-Muñoz R, Vicente A, Lopez-Baltazar J, Barry CS, Liu Y, Chetelat R, Granell A, Van Deynze A, Giovannoni JJ, Bennett AB (2012) Uniform ripening encodes a Golden 2-like transcription factor regulating tomato fruit chloroplast development. Science 336:1711–1715

Prasanna V, Prabha TN, Tharanathan RN (2007) Fruit ripening phenomena-an overview. Critical Rev Food Sci Nut 47:1–19

Qiao H, Chang KN, Yazaki J, Ecker JR (2009) Interplay between ethylene, ETP1/ETP2 F-box proteins, and degradation of EIN2 triggers ethylene responses in Ərəbidopsis. Genes Dev 23:512–521

Qin G, Gu H, Ma L, Peng Y, Deng XW, Chen Z, Qu L-J (2007) Disruption of phytoene desaturase gene results in albino and dwarf phenotypes in Ərəbidopsis by impairing chlorophyll, carotenoid, and gibberellin biosynthesis. Nature Cell Res 17:471–482

Qin G, Wang Y, Cao B, Wang W, Tian S (2012) Unraveling the regulatory network of the MADS box transcription factor RIN in fruit ripening. Plant J 70:243–255

Reina-Pinto JJ, Yephremov A (2009) Surface lipids and plant defenses. Plant Physiol Biochem 47:540–549

Resnick JS, Wen C-K, Shockey JA, Chang C (2006) REVERSION-TO-ETHYLENE SENSITIVITY1, a conserved gene that regulates ethylene receptor function in Ərəbidopsis. Proc Natl Acad Sci USA 103:7917–7922

Rodriguez F, Esch J, Hall A, Binder B, Schaller GE, Bleecker AB (1999) A copper cofactor for the ETR1 receptor from Ərəbidopsis. Science 283:996–998

Rodriguez-Concepcion M, Boronat A (2002) Elucidation of the methylerythritol phosphate pathway for isoprenoid biosynthesis in bacteria and plastids. A metabolic milestone achieved through genomics. Plant Physiol 130:1079–1089

Rodríguez-Gacio MC, Iglesias-Fernández R, Carbonero P, Matilla AJ (2012) Softening-up mannan-rich cell walls. J Exp Bot 63:3976–3988

Rohdich F, Zepeck F, Adam P, Hecht S, Kaiser J, Laupitz R, Grawert T, Amslinger S, Eisenreich W, Bacher A, Arigoni D (2003) The deoxyxylulose phosphate pathway of isoprenoid biosynthesis: studies on the mechanisms of the reactions catalyzed by IspG and IspH protein. Proc Natl Acad Sci USA 100:1586–1591

Rose JK, Lee HH, Bennett AB (1997) Expression of a divergent expansin gene is fruit-specific and ripening-regulated. Proc Natl Acad Sci USA 94:5955–5960

Rottmann WH, Peter GF, Oeller PW, Keller JA, Shen NF, Nagy BP, Taylor LP, Campbell AD, Theologis A (1991) 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase in tomato is encoded by a multigene family whose transcription is induced during fruit and floral senescence. J Mol Biol 222:937–961

Sacher JA (1973) Senescence and post harvest physiology. Annu Rev Plant Physiol 24:197–310

Saladié M, Rose JK, Cosgrove DJ, Catalá C (2006) Characterization of a new xyloglucan endotransglucosylase/hydrolase (XTH) from ripening tomato fruit and implications for the diverse modes of enzymic action. Plant J. 47:282–295

Saladié M, Matas AJ, Isaacson T, Jenks MA, Goodwin SM, Niklas KJ, Xiaolin R, Labavitch JM, Shackel KA, Fernie AR, Lytovchenko A, O'Neill MA, Watkins CB, Rose JK (2007) A reevaluation of the key factors that influence tomato fruit softening and integrity. Plant Physiol 144:1012–1028

Schaffer RJ, Friel EN, Souleyre EJF, Bolitho K, Ledger KTS, Bowen JH, Ma J-H, Nain B, Cohen D, Gleave AP, Crowhurst RN, Janssen BJ, Yao J-L, Newcomb RD (2007) A genomics approach reveals that aroma production in apple is controlled by ethylene predominantly at the final step in each biosynthetic pathway. Plant Physiol 144:1899–1912

Seymour GB, Manning K, Eriksson EM, Popovich AH, King GJ (2002) Genetic identification and genomic organization of factors affecting fruit texture. J Exp Bot 53:2065–2071

Seymour GB, Ryder CD, Cevik V, Hammond JP, Popovich A, King GJ, Vrebalov J, Giovannoni JJ, Manning K (2011) A SEPALLATA gene is involved in the development and ripening of strawberry (Fraqariya × ananassa Duch.) fruit, a non-climacteric tissue. J Exp Bot 62:1179–1188

Seymour GB, Østergaard L, Chapman NH, Sandra Knapp S, Martin C (2013) Fruit development and ripening. Annu Rev Plant Biol 64:1–11

Shi JX, Adato A, Alkan N, He Y, Lashbrooke J, Matas AJ, Meir S, Malitsky S, Isaacson T, Prusky D, Leshkowitz D, Schreiber L, Granell AR, Widemann E, Grausem B, Pinot F, Rose JK, Rogachev I, Rothan C, Aharoni A (2013) The tomato SlSHINE3 transcription factor regulates fruit cuticle formation and epidermal patterning. New Phytol 197:468–480

Shivaprasad PV, Chen HM, Patel K, Bond DM, Santos BA, Baulcombe DC (2012) A microRNA superfamily regulates nucleotide binding site-leucine-rich repeats and other mRNAs. Plant Cell 24:859–874

Smirnoff N, Conklin PL, Loewus FA (2001) Biosynthesis of ascorbic acid in plants: a renaissance. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 52:437–467

Smith CJ, Watson CF, Bird CR, Ray J, Schuch W, Grierson D (1990) Expression of a truncated tomato polygalacturonase gene inhibits expression of the endogenous gene in transgenic plants. Mol Gen Genet 224:477–481

Smith DL, Abbott JA, Gross KC (2002) Down-regulation of tomato beta-galactosidase 4 results in decreased fruit softening. Plant Physiol 129:1755–1762

Sozzi GO, Greve LC, Prody GA, Labavitch JM (2002) Gibberellic acid, synthetic auxins, and ethylene differentially modulate alpha-L-arabinofuranosidase activities in antisense 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase tomato pericarp discs. Plant Physiol 129:1330–1340

Speirs J, Lee E, Holt K, Yong-Duk K, Scott NS, Schuch W, Loveys B (1998) Genetic manipulation of alcohol dehydrogenase levels in ripening tomato fruit affects the balance of some flavor aldehydes and alcohols. Plant Physiol 117:1047–1058

Tacken E, Ireland H, Gunaseelan K, Karunairetnam S, Wang D, Schultz K, Bowen J, Atkinson RG, Johnston JW, Putterill J, Hellens RP, Schaffer RJ (2010) The role of ethylene and cold temperature in the regulation of the apple POLYGALACTURONASE1 gene and fruit softening. Plant Physiol 153:294–305

Tadiello A, Pavanello A, Zanin D, Caporali E, Colombo L, Rotino GL, Trainotti L, Casadoro G (2009) A PLENA-like gene of peach is involved in carpel formation and subsequent transformation into a fleshy fruit. J Exp Bot 60:651–661

Tatsuki M, Mori H (2001) Phosphorylation of tomato 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase, LE-ACS2, at the C-terminal region. J Biol Chem 276:28051–28057

Thomas TR, Shackel KA, Matthews MA (2008) Mesocarp cell turgor in Vitis vinifera L. berries throughout development and its relation to firmness, growth, and the onset of ripening. Planta 228:1067–1076

Tian MS, Prakash S, Elgar HJ, Young H, Burmeister DM, Ross GS (2000) Responses of strawberry fruit to 1-methylcyclopropene (1-MCP) and ethylene. Plant Growth Regul 32:83–90

Tian L, Magallanes-Lundback M, Musetti V, DellaPenna D (2003) Functional analysis of b- and e-ring carotenoid hydroxylases in Ərəbidopsis. Plant Cell 15:1320–1330

Tieman DM, Taylor MG, Ciardi JA, Klee HJ (2000) The tomato ethylene receptors NR and LeETR4 are negative regulators of ethylene response and exhibit functional compensation within a multigene family. Proc Natl Acad Sci USA 97:5663–5668

Tieman DM, Ciardi JA, Taylor MG, Klee HJ (2001) Members of the tomato LeEIL (EIN3-like) gene family are functionally redundant and regulate ethylene responses throughout plant development. Plant J 26:47–58

Tieman D, Taylor M, Schauer N, Fernie AR, Hanson AD, Klee HJ (2006) Tomato aromatic amino acid decarboxylases participate in synthesis of the flavor volatiles 2-phenylethanol and 2 phenylacetaldehyde. Proc Natl Acad Sci USA 103:8287–8292

Tieman DM, Zeigler M, Schmelz E, Taylor MG, Rushing S, Jones JB, Klee HJ (2010) Functional analysis of a tomato salicylic acid methyl transferase and its role in synthesis of the flavor volatile methyl salicylate. Plant J 62:113–123

Tieman DM, McIntyre L, Blandon-Ubeda A, Bies D, Odabasi A, Rodriguez G, van der Knaap E, Taylor M, Goulet C, Mageroy MH, Snyder D, Colquoun T, Moskowitz H, Sims C, Clark D, Bartoshuk L, Klee H (2012) The chemical interactions underlying tomato flavor preferences. Curr Biol 22:1–5

Tigchelaar EC, Mcglasson WB, Franklin MJ (1978) Natural and ethephon-stimulated ripening of F1 hybrids of the ripening inhibitor (rin) and non-ripening (nə də) mutants of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) Australian J. Plant Physiol 5:449–456

Tomato Genome Consortium (2012) The tomato genome sequence provides insights into fleshy fruit evolution. Nature 485:635–641

Treutter D (2005) Significance of flavonoids in plant resistance and enhancement of their biosynthesis. Plant Biol 7:581–591

Verhoeyen ME, Bovy A, Gollins G, Muir S, Robinson S, de Vos CHR, Colliver S (2002) Increasing antioxidant levels in tomatoes through modification of the flavonoid biosynthetic pathway. J Exp Bot 53:2099–2106

Vicente AR, Saladié M, Rose JKC, Labavitch JM (2007) The linkage between cell wall metabolism and fruit softening: looking to the future. J Sci Food Agric 87:1435–1448

Vogel JT, Tieman DM, Sins CA, Odabasi AZ, Clark DG, Klee HJ (2010) Carotenoid content impacts flavor acceptability in tomato (Solanum lycopersicum). J Sci Food Agric 90:2233–2240

Vogg G, Fischer S, Leide J, Emmanuel E, Jetter R, Levy AA, Riederer M (2004) Tomato fruit cuticular waxes and their effects on transpiration barrier properties: functional characterization of a mutant deficient in a very-long-chain fatty acid b-ketoacyl-CoA synthase. J Exp Bot 55:1401–1410

Vrebalov J, Ruezinsky D, Padmanabhan V, White R, Medrano D, Drake R, Schuch W, Giovannoni J (2002) A MADS-Qutu gene necessary for fruit ripening at the tomato ripening-inhibitor (rin) locus. Science 296:343–346

Vrebalov J, Pan IL, Arroyo AJ, McQuinn R, Chung M, Poole M, Rose J, Seymour G, Grandillo S, Giovannoni J, Irish VF (2009) Fleshy fruit expansion and ripening are regulated by the tomato SHATTERPROOF gene, TAGL1. Plant Cell 21:3041–3062

Wakabayashi K, Hoson T, Huber DJ (2003) Methyl de-esterification as a major factor regulating the extent of pectin depolymerization during fruit ripening: a comparison of the action of avocado (Amerika Persea) and tomato (Lycopersicon esculentum) polygalacturonases. J Plant Physiol 160:667–673

Wang J, Chen G, Hu Z, Chen X (2007) Cloning and characterization of the EIN2-homology gene LeEIN2 from tomato. DNA Seq 18:33–38

Wheeler GL, Jones MA, Smirnoff N (1998) The biosynthetic pathway of vitamin C in higher plants. Nature 393:365–369

Wilkinson JQ, LanahanMB YenH-C, Giovannoni JJ, Klee HJ (1995) An ethylene-inducible component of signal transduction encoded by Never-Ripe. Science 270:1807–1809

Winkel-Shirley B (2001) Flavonoid biosynthesis. A colorful model for genetics, biochemistry, cell biology, and biotechnology. Plant Physiol 126:485–493

Wong D (2008) Enzymatic deconstruction of backbone structures of the ramified regions in pectins. Protein J 27:30–42

Yahia EM, Contreras-Padilla M, Gonzalez-Aguilar G (2001) Ascorbic acid content in relation to ascorbic acid oxidase activity and polyamine content in tomato and bell pepper fruits during development, maturation, and senescence. Lebensm-Wiss u-Technol 34:452–457

Yang Y, Wu Y, Pirrello J, Regad F, Bouzayen M, Deng W, Li Z (2010) Silencing Sl-EBF1Sl-EBF2 expression causes constitutive ethylene response phenotype, accelerated plant senescence, and fruit ripening in tomato. J Exp Bot 61:697–708

Yeats TH, Howe KJ, Matas AJ, Buda GJ, Thannhauser TW, Rose JKC (2010) Mining the surface proteome of tomato (Solanum lycopersicum) fruit for proteins associated with cuticle biogenesis. J Exp Bot 61:3759–3771

Yeats TH, Buda GJ, Wang Z, Chehanovsky N, Moyle LC, Jetter R, Schaffer AA, Rose JKC (2012a) The fruit cuticle of wild tomato species exhibit architectural and chemical diversity, providing a new model for studying the evolution of cuticle function. Plant J 69:655–666

Yeats TH, Martin LBB, Viart HM-F, Isaacson T, He Y, Zhao L, Matas AJ, Buda GJ, Domozych DS, Clausen MH, Rose JKC (2012b) The identification of cutin synthase: formation of the plant polyester cutin. Nat Chem Bio 8:609–611

Zhang B, Chen K, Bowen J, Allan A, Espley R, Karunairetnam S, Ferguson I (2006) Differential expression within the LOX gene family in ripening kiwifruit. J Exp Bot 57:3825–3836

Zhong S, Lin Z, Grierson D (2008) Tomato ethylene receptor-CTR interactions: visualization of NEVER-RIPE interactions with multiple CTRs at the endoplasmic reticulum. J Exp Bot 59:965–972

Zhong S, Fei Z, Chen Y-R, Zheng Y, Huang M, Vrebalov J, McQuinn R, Gapper N, Liu B, Xiang J, Shao Y, Giovannoni JJ (2013) Single-base resolution methylomes of tomato fruit development reveal epigenome modifications associated with ripening. Nat Biotechnol 31:154–159


Materiallar və metodlar

Plazmid konstruksiyası

The target site for CRISPR/Cas9-mediated RIPENING INHIBITOR (RIN) mutagenesis was selected using the CRISPR-P program (http://cbi.hzau.edu.cn/cgi-bin/CRISPR) (Supporting Information, Fig. S1a). The 20-bp oligos were cloned into AtU3d and AtU3b vectors and the sgRNA expression cassettes assembled into pYLCRISPR/Cas9-Ubi-H binary plasmid by Golden Gate ligation (Ma və b., 2015 ). Agrobacterium tumefaciens-mediated transfer of T-DNA was used for stable transformation of tomato (Sun və b., 2006 Kimura and Sinha, 2008 ). For the mutation analysis, genomic DNA was extracted from young tomato leaves using a Plant Genomic DNA Kit (Tiangen, China) and used as a template to amplify the RIN fragment using PCR and the fragments sent for sequencing. The primer pairs used for vector construction and mutation analyses are listed in Table S1.

Bitki materialı və böyümə şəraiti

Wild-type (WT) tomato (Solanum lycopersicum Alisa Craig, AC) and RIN-CRISPR seedlings were grown in a glasshouse under long-day conditions (16 h : 8 h, light : dark photperiod) at a temperature of 26°C. For gene expression analysis, organs were collected, frozen in liquid N2, and stored at −80°C until RNA extraction. Three independent samplings were performed for each measurement.

Tomato fruit nuclei isolation and Western blotting

Nuclei were isolated from tomato fruits picked at B + 5 stage and assayed for RIN protein. Fruit samples were ground into a powder under liquid N2 and the mixture was extracted with buffer (0.25 M sucrose, 10 mM Tris-HCl pH7.5, 1 mM MgCl2, 0.5% PVP, 0.5% Triton X-100, Roche protease inhibitor tablet) and the suspension filtered using miracloth (475855 Millipore, Pittsburgh, PA, USA). After centrifugation at 10 000 g for 10 min, the precipitate was washed with extraction buffer and centrifuged again at 10 000 g for 10 min, and the pellet was resuspended in percoll buffer (0.25 M sucrose, 95% Percoll, 10 mM Tris-HCl pH7.5, Roche protease inhibitor tablet). The floating layer was collected after centrifugation at 10 000 g for 10 min, diluted to 30% with extraction buffer, centrifuged at 10 000 g for 10 min, to pellet the nuclei and stored at −80°C or used for SDS-PAGE assay.

Western blotting was carried out as described (Li və b., 2018). Briefly, protein extracts were separated on 10% SDS-PAGE gels and transferred to a polyvinylidene fluoride (PVDF) membrane blocked in 5% nonfat milk for 2 h at room temperature. A specific polyclonal antibody produced in rabbit raised against the C-terminal end of RIN (amino acids 75–242) was added in a ratio of 1 : 1000 and incubated for 2 h at room temperature. Membranes were washed with Tris-buffered saline plus Tween-20 three times, 15 min each time. The anti-rabbit horseradish peroxidase secondary antibody was added at a ratio of 1 : 10 000 and incubated for 2 h at room temperature. After three washes with Tris-buffered saline plus Tween-20, the membranes were visualized using a horseradish peroxidase-enhanced chemiluminescence system.

Ethylene production measurement

For the measurement of ethylene (ET) production, each fruit was placed in a sealed gas-tight 300 ml container at 25°C for 1 h, and a 1 ml headspace gas sample was analyzed using GC (6890N GC system Agilent, Folsom, CA, USA) equipped with a flame ionization detector (Ma və b., 2016 ).

Colour measurement

A Hunter Lab Mini Scan XE Plus colorimeter (Hunter Associates Laboratory Inc., Reston, VA, USA) with the CIE L*a*b colour system was chosen for pericarp colour assay (Komatsu və b., 2016). At least six biological replicates were used for each assay.

Carotenoid content assay

Carotenoid extraction followed the methods reported by Xu və b. ( 2006 ) 100 mg tomato fruit samples were ground to a powder and frozen at −80°C, 250 μl methanol was added, vortexed to mix, followed by 500 μl chloroform, vortexed again and 250 μl 50 mM Tris buffer (pH 7.5, containing 1 M NaCl) was added, followed by vortexing. After centrifugation (15 000 g for 10 min at 4°C), the lower chloroform phase was collected. The chloroform extraction was repeated two or three times and the chloroform phases combined and dried under flowing N2. The residue was dissolved in 100 μl ethyl acetate (HPLC grade), and 50 μl transferred to HPLC sample analysis tubes. Carotenoid content was assayed according to the methods reported by Zheng və b. ( 2015 ): A volume of 20 μl for each sample was absorbed for HPLC analysis, carried out using a Waters liquid chromatography system (e2695) equipped with a photodiode array (PDA) detector (2998). A C30 carotenoid column (250 mm × 4.6 mm YMC, Japan) was used to elute the carotenoids with a methanol: H2O (9 : 1, v/v, eluent A) solution and methyl tert-butyl ether (MTBE) (100%, eluent B) solution containing 0.01% (w/v) butylated hydroxytoluene (BHT). The linear gradient program was performed as follows: 8% B to 25% B for 30 min, 25% B to 70% B for 5 min, 70% B for 5 min, and back to the initial 8% B for re-equilibration for 10 min. The flow rate was 1 ml min −1 . To avoid light degradation of carotenoids the extraction and analysis were performed under subdued light.

Firmness measurement

The firmness of the pericarp was assayed using a penetrometer (TA-XT2i texture analyzer Stable Micro Systems, Stable Micro Systems Ltd, Surrey, UK) according to the manufacturer's instructions. At least six biological replicates were used for each assay.

Volatiles assays

Measurements of volatiles were carried out according to Zhang və b. ( 2010 ), with modifications. First, 5 g of frozen flesh tissue was ground in liquid N2 and transferred to a 15-ml vial containing 5 ml of saturated sodium chloride solution. Before vials were sealed, 20 μl of 2-octanol (0.8 mg ml −1 ) was added as an internal standard and vortexed for 10 s.

For solid-phase microextraction (SPME), samples then were equilibrated at 40°C for 30 min before being exposed to a fiber coated with 50/30 μm DVB/CAR/PDMS (Supelco Co., Bellefonte, PA, USA). Volatiles were subsequently desorbed over 5 min at 230°C into the splitless injection port of the GC-flame ionization detector (FID). An Agilent 7890A GC equipped with an FID and a DB-WAX column (30 m × 0.32 mm, 0.25 μm internal diameter J&W Scientific, Folsom, CA, USA) was used for volatile analysis. Chromatography conditions were as follows: injector, 230°C initial oven temperature, 34°C held for 2 min, increased by 2°C min −1 to 60°C, then increased by 5°C min −1 to 220°C, and held for 2 min. Nitrogen was used as carrier gas at 1.0 ml min −1 . Volatiles were identified by comparison with retention times of authentic standards. Further identification of volatile compounds was by capillary gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) (7890A-5975C) performed using an HP-5 MS column (30 m × 0.25 mm, 0.25 μm J&W Scientific, Folsom, CA). Injection port temperature was 240°C, with a split ratio of 5 : 1. Helium was used as the carrier gas at a rate of 1.0 ml min −1 . The column temperature was held at 40°C for 2 min, increased by 5°C min −1 to 60°C, then increased by 10°C min −1 to 250°C, and held for 5 min. MS conditions were as follows: ion source, 230°C electron energy, 70 eV multiplier voltage, 1247 V GC-MS interface zone, 280°C and a scan range, 30–250 mass units. Volatiles were identified on the basis of a comparison of their electron ionization (EI) mass spectra to published data and data from authentic standards. Quantitative determination of compounds was carried out using the peak of the internal standard as a reference value and calculated on the basis of standard curves constructed with authentic compounds.

Ethylene, 1-methylcyclopropene (1-MCP) and propylene treatment

Tomato fruits at the mature green (MG) stage, before any sign of colour change, were placed in an air-tight 1-l plastic container with 100 ppm ET, 1000 ppm propylene or 10 ppm 1-MCP. 1000 ppm propylene is equivalent to 10 ppm ET treatment (McMurchie və b., 1972 ) and is used in order to distinguish it from endogenous ET production by GC equipment. The treatment was conducted continually in an incubator under a 16 h : 8 h, light : dark photoperiod at 25°C, with at least three biological replicates for each treatment. RIN-CRISPR tomato fruits treated with ET for 48 h, and control WT and RIN-CRISPR treated with air, were chosen for gene expression assay using qRT-PCR. The gas environments (air, ET, propylene, 1-MCP) were replenished every 24 h.

RNA isolation and quantitative reverse transcription (qRT)-PCR

Isolation of RNA from tomato fruit pericarp at different ripening stages was as described previously (Zhu və b., 2015). Total RNA extraction from tomato fruit pericarp was carried out using Trizol reagent, and RNA integrity was verified by 1.5% (v/v) agar gel electrophoresis. Genomic DNA was removed from RNA preparations by digestion with DNase I (Invitrogen, cat. no. AM1907), and RNA quality and quantity were confirmed by spectrophotometry (Thermo Scientific, Waltham, MA, USA NanoDrop 1000). RNA was reverse-transcribed into cDNA using cDNA synthesis kit (Bio-RAD, cat. no. 1708890) according to the manufacturer's instructions. qRT-PCR was conducted using FastStart Essential DNA Green Master (Roche, cat. no. 06402712001) with a LightCycler480 (Roche). Relative gene expression values were calculated using the 2 -ΔΔCt method (Livak and Schmittgen, 2001 ). The tomato ACTIN gene (Solyc03g078400) was used as an internal reference gene. At least three biological replicates were included for each point, and each replicate was from independent sampling. The primer pairs used in qRT-PCR analyses are listed in Table S2.

Water loss

The water lost by tomato fruits was calculated as FW (%) = fruit weight (g) – fresh fruit weight (g)/ fresh fruit weight (g) × 100%. More than ten biological replicates were used for each assay.

Promoter sequence and motif assay

Promoter sequences 2.0 kb in length were downloaded from Sol Genomics Network (https://solgenomics.net/), various CArG-box elements were from Fujisawa və b. ( 2013 ). The GCC-box, a characteristic cis-element binding site for ERFs, was from Licausi və b. ( 2013 ). An AP2/ERF binding motif, ATCTA was from Welsch və b. ( 2007 ).

Statistik təhlil

Microsoft Excel 2010 and S PSS (IBM SPSS Statistics, v.22 SPSS Inc., Chicago, IL, USA) were used for statistical analyses. Duncan's multiple range test was used (P < 0,05).


WineCrisp: New Apple Was More Than 20 Years In The Making

A new, late-ripening apple named WineCrisp&trade which carries the Vf gene for scab resistance was developed over the past 20 plus years through classical breeding techniques, not genetic engineering. License to propagate trees will be made available to nurseries through the University of Illinois.

Being resistant to apple scab is a big plus for growers, said University of Illinois plant geneticist Schuyler Korban, as it significantly reduces the number of chemical fungicide sprays. "Apple scab is the number one disease that growers have to spray for &ndash 15 to 20 times per season &ndash so not having to spray for apple scab lowers the cost for the grower and is better for the environment."

Why does it take over 20 years to make an apple? "It takes a long time to develop an apple because you want to test it in different locations, you want to observe it over a number of years, and it takes awhile for an apple to get noticed," said geneticist Schuyler Korban. "I liked it the first time I saw it and I liked the flavor. It has an excellent mix of sugar and acid and a very pleasant flavor, but I was hesitant because of the finish &ndash it's not glossy."

Korban thought the finish might pose a problem because consumers are accustomed to seeing waxed fruit in stores and may not like the matte finish that Korban calls "scarfy" or dull. "Red Delicious is a very good looking apple, but has no flavor, very bland. It's still ranked as the number one apple in the industry however, there are more new apple varieties available now."

After some time, Korban decided that the crispness and the flavor would be more important factors to consumers than the finish and continued to develop the new apple.

His research, in collaboration with breeders at Rutgers and Purdue Universities, will be published in a 2009 issue of the journal of HortScience, and a U.S. patent is currently pending. The apple is available now to nurseries who want to apply for a license to propagate trees and make them available to apple growers nationwide. "There is a nursery in the southeastern part of the United States that really liked the apple and feel that there is a market for it in the south so they're getting a license to grow it."

It also takes time for a new orchard or even for an existing orchard to plant new apple varieties. But when WineCrisp&trade cuttings are grafted into a fast-growing root stock, Korban says there could be fruit on the tree in as little as three years.

Korban said that the tree is extremely productive and the fruit is firm, but it's not a bright red color. "It's more of a dark red and looks like a deep red wine so we wanted to include 'wine' in the name. It also resembles an older variety that consumers are familiar with called Winesap. "When you pick it up and squeeze it, it's very firm," he said. "We used to call it 'the Rock.' We wanted that characteristic to be in the name so we added 'crisp' and named it WineCrisp&trade.

"There's a market for apples with different flavors, different textures, different ripening and maturity dates &ndash you don't know what the likes and dislikes of the consumer will be," said Korban. "Some of our recent releases are varieties that focus on late ripening which would prolong the apple-growing season and WineCrisp&trade matures two weeks after Red Delicious. They can be harvested all the way through to the end of October. And in good cold storage, they'll keep for eight to nine months. That's another important trait of this variety &ndash it keeps very well in cold storage."

The original cross in the breeding process was done at Rutgers in 1989. The seeds were grown into seedlings and inoculated with apple scab at Purdue. Those seedlings that demonstrated resistance to apple scab were split between the three universities as a part of the Purdue-Rutgers-Illinois (PRI) Cooperative Breeding Program, which has been very successful in naming and releasing over 25 disease-resistant apple varieties, some with other collaborating partners around the world. Because the University of Illinois made the selection, U of I will be the primary licensing institution.

Funding for the research was provided by the University of Illinois and PRI.

Hekayə Mənbəsi:

Materiallar tərəfindən təmin edilmişdir University of Illinois at Urbana-Champaign. Qeyd: Məzmun üslub və uzunluğa görə redaktə edilə bilər.


Legal status: western countries

In different Western countries, selected ripening agents are allowed to be applied to ripen specific fruits under controlled condition. In this process, ethylene is injected to the fruit ripening chambers in a controlled manner, to help instigating the ripening process [1].

Şimali Amerika

In USA, the United States’ NOSB [National Organic Standard Board] recommends the use of ethylene for post-harvest ripening of tropical fruits and de-greening of citrus this is stated in the ‘Formal Recommendation by the National Organic Standard Board (NOSB) to the Organic Program (NOP)’ [17]. The United States Environmental Protection Agency (EPA) allows the use of ethylene as plant growth regulator and herbicide. Additionally, ethylene is exempt from the requirement of a tolerance (maximum residue level) when used as a growth regulator on fruits and vegetables [71].

The regulations set by the Canadian Food Inspection Agency (CFIA) imposes that no person shall market, produce, import, export, or take part in interprovincial trade of fruits and vegetables unless it is not contaminated, edible, free of any live insect or other living thing that may be injurious to health, and produced hygienically [12]. CFIA gives more emphasis on ensuring the quality of water used in food and vegetable processing the following features are suggested to ensure production under hygienic conditions:

No stagnant or polluted water should be used in the washing or fluming of the produce

Only potable water is to be used in the final rinsing of the produce to remove any surface contaminant before packing

The final rinse water, if reused, is used only in the initial washing or fluming of the product.

Avropa

United Kingdom’s Soil Association permits the use of ethylene to ripen bananas and kiwi [Soil Association Organic Standards, rev 16.4, June 2011] [19]. The UK Food Safety Act enacted in 1990 imposes that any person who renders any food injurious to health by means of any of the operations—adding any article or substance to the food, using any article or substance as an ingredient in the preparation of the food, abstracting any constituent from the food, and subjecting the food to any other process or treatment with intent that it shall be sold for human consumption, shall be guilty of an offense [14].

The European Food Safety Authority (EFSA) under the regulation (EC) No 396/2005 developed the Standard Sample Description (SSD), which is a standardized model for the reporting of harmonized data on analytical measurements of chemical substances present in food, feed, and water [72]. As an attempt to make significant reforms of the Common Market Organization (CMO) for certain agricultural products, the European Union extended its approach to the promotion, quality, and marketing standards for fresh and processed fruit and vegetables. Provisions for a management committee that apply to the fruit and vegetable sector as well as a range of other agricultural products came into effect from January 1, 2008, under Council Regulation (EC) No. 1234/2007. Key objectives of the regulation are as follows [73]:

Improvement of product quality

Boosting products’ commercial value

Promotion of products, whether in a fresh or processed form

Environmental measures and methods of production respecting the environment, including organic farming

Crisis prevention and management.

Other international organizations

Evidently, the laws in different developed countries do not completely prohibit using artificial ripening agents, and often permit the control use of ethylene gas for artificial fruit ripening. The International Federation of Organic Agriculture Movements’ (IFOAM) enlists ethylene gas as ‘Only for ripening fruits’ in the IFOAM Indicative List of Substances for Organic Production and Processing. Similarly, the Asia Regional Organic Standard (AROS) developed by Global Organic Market Access (GOMA) (a project of FAO), IFOAM, and UNCTAD (United Nations Conference on Trade and Development) permit the usage of ethylene for the ripening of kiwifruit, bananas, and other tropical fruits [74].


P. peruviana: One of the main drawbacks of P. peruviana seems to be the long growing season required before fruits can be harvested. Production of fruit can also be somewhat moderate. In addition, reliable sources for seed are limited. Some of these issues are being addressed by Dr. Durner in his trials.

An advantage of P. peruviana is that the plants are larger and more upright and that the fruit does not abscise when ripe, giving more control and easier conditions (not stooping on the ground) for harvesting. On the other hand, because they don’t abscise when ripe, they must be cut off the plant, which makes harvest more time consuming.

P. pruinosa: Ground cherry gives the grower a much longer harvest window and seems to be more productive than P. peruviana. There is also ample and varied sources of seed, though there is little documentation about specific differences between varieties. The major disadvantage of P. pruinosa is the very low, sprawling habit of the plant, which makes harvest difficult.

Mike Brown is the owner of Pitspone Farm — a small-acreage berry farm and nursery in central New Jersey.