Məlumat

Ökaryotlar transkripsiyanı necə dayandırır? (Campbell Biologiyasına dair açıqlama)

Ökaryotlar transkripsiyanı necə dayandırır? (Campbell Biologiyasına dair açıqlama)


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Eukaryotların transkripsiyanı necə dayandırdığını başa düşməkdə çətinlik çəkirəm. Kempbell Biologiyasını öyrənərək (səh. 342, 10-cu nəşr) oxudum:

Eukariotlarda RNT polimeraza II DNT-də poliadenilləşmə siqnal ardıcıllığını transkripsiya edir, bu da pre-mRNT-də poliadenilləşmə siqnalını (AAUAAA) təyin edir. Buna "siqnal" deyilir, çünki altı RNT nukleotidindən ibarət bu uzanma göründükdən sonra nüvədəki müəyyən zülallarla dərhal bağlanır.

Mətn belə davam edir:

Daha sonra, AAUAA-dan aşağı axında təxminən 10-35 nükleotid olan bir nöqtədə, bu zülallar polimerazdan azad edərək pre-mRNA-nı sərbəst buraxır.

Bu, nəhayət kəsilməmişdən əvvəl AAUAA transkripsiyasından sonra pre-mRNT-nin 10-35 nukleotid üçün sintez olunmağa davam etməsi deməkdirmi?

Çox təşəkkürlər.


Levinin Genes XI-ə görə - Krebs et. eukaryotik transkripsiya, RNT birləşmə və emal haqqında

RNT polimeraz II -nin həqiqətən müəyyən bir yerdə sonlanma hadisəsi ilə məşğul olub -olmadığı aydın deyil. Mümkündür ki, onun dayandırılması yalnız sərbəst şəkildə göstərilmişdir. Bəzi transkripsiya vahidlərində sonlanma mRNT-nin yetkin 3' ucuna uyğun gələn 1000 bp-dən çox aşağı axınında baş verir (bu, müəyyən bir ardıcıllıqla parçalanma nəticəsində yaranır) Xüsusi terminator ardıcıllıqlarından istifadə etmək əvəzinə, ferment daxilində RNT sintezini dayandırır. olduqca uzun "terminator bölgələrində" yerləşən bir çox sayt. Fərdi xitam sahələrinin xarakteri əsasən məlum deyil.

Deməyə davam edir,

Pre-mRNA-ların əksəriyyətində parçalanma/poliadenilləşmə yeri iki tərəfdədir cis-fəaliyyət göstərən siqnallar: saytdan 11-30 nukleotid arasında yerləşən yuxarı axın AAUAAA motivi və aşağı axın U ilə zəngin və ya GU ilə zəngin element. AAUAAA, parçalanma və poliadenilasyon üçün lazımdır, çünki AAUAAA hexamerinin silinməsi və ya mutasiyası poliadenilləşmiş 3 'ucunun yaranmasını maneə törədir (baxmayaraq ki, bitkilərdə və göbələklərdə AAUAAA motivindən xeyli dəyişikliklər ola bilər).

Əlavə etməliyəm ki, 11 -dən 30 -a və ya dediyiniz kimi 10-35 nukleotidlərin əhəmiyyəti, sizə RNT -də oturan və zülalın aktiv olduğu yerdəki protein kompleksinin təxmini ölçüsünü izah etməsidir. Xitam ardıcıllığını tanıyan domen təxminən 10-35 baza genişliyindədir. Çox güman ki, bu dəyişiklik, kök döngə quruluşu yaratmaq üçün sonlandırma ardıcıllığı qabiliyyətini izləyən RNT ardıcıllığından qaynaqlanır.

Campbell, molekulyar biologiyada verdikləri məlumatlara mütləq əsaslı və daha az nüanslı bir yanaşma tətbiq edir. Bu yanaşma bəzi təfərrüatları təmin etmək və müxtəlif bioloji sistemlər arasında təkamül ümumi cəhətlərini göstərməkdir. Bu yanaşma yaxşıdır, çünki o, sizi bioloji sistemlərin bir-biri ilə əlaqəli olması haqqında düşüncə çərçivəsinə gətirir.

Tədrisinizdə irəlilədikcə reallığın və xüsusiyyətlərin giriş kurslarında təqdim edildiyindən daha mürəkkəb və istisnalı olduğunu görürsünüz. Ancaq daha qabaqcıl kurslar bütün bir semiti Campbell -in bir fəsildə əhatə etdiyi mövzulara həsr edir. Kempbell dəqiqdir, lakin zərurətdən natamamdır.


Eukariotlar transkripsiyanı necə dayandırırlar? (Campbell Biologiyasına dair aydınlıq) - Biologiya

Bu məzmuna baxmaq üçün J o VE -yə abunə olmaq lazımdır. Siz yalnız ilk 20 saniyəni görə biləcəksiniz.

JoVE video pleyeri HTML5 və Adobe Flash ilə uyğun gəlir. HTML5 və H.264 video kodekini dəstəkləməyən köhnə brauzerlər hələ də Flash əsaslı video pleyerdən istifadə edəcəklər. Flash -ın ən yeni versiyasını buradan yükləməyi məsləhət görürük, lakin 10 və yuxarıdakı bütün versiyaları dəstəkləyirik.

Bu kömək etmirsə, bizə bildirin.

Ökaryotların üç fərqli RNT polimerazası var: RNT polimeraz I, II və III.   Bir -birinə bənzəyirlər və prokaryotik RNT polimerazları ilə ortaq xüsusiyyətlərə malikdirlər, lakin fərqli RNT siniflərini köçürürlər.  

RNT Polimeraz I ribozomal RNT genlərinin çoxunu, RNT Polimeraz III isə tRNA genlərini, bəzi snRNA və digər kiçik RNT genlərini transkripsiyaya salır.

Zülal kodlayan RNT genlərinin əksəriyyəti RNT polimeraza II tərəfindən transkripsiya edilir.

 RNA Polimeraza II-nin karboksi-terminal domeni onun fermentativ fəaliyyətini tənzimləyən bir neçə transkripsiya faktoru üçün bağlayıcı yer kimi xidmət edir. Bu amillərin bağlanması bu sahənin fosforlaşma modelindən asılıdır.

RNT Polimeraz II üçün ən yaxşı öyrənilmiş promotor TATA qutusu adlanır. O, qorunmuş DNT ardıcıllığına malikdir, ən çox T-A-T-A-A-A, adətən transkripsiyanın başlanğıc yerindən 25 nukleotid yuxarıda yerləşir.

RNA polimeraz II, A, B, D, E, F və H variantları olan ümumi transkripsiya faktorları, xüsusən də Transkripsiya Faktoru 2 və ya TFII kimi tanınan bir çox zülal dəstəyi ilə promoter sahəsinə istiqamətləndirilir.

Transkripsiya TFIID -in TATA qutusuna bağlanması ilə başlayır. TFIID -in tərkib hissəsi olan TATA qutusu Bağlayıcı Zülal və ya TBP, TATA qutusu DNT ardıcıllığını tanıyır.  

Daha sonra TBP TFIIA və TFIIB ilə əlaqə qurur, promotor yerində RNT Polimerazın TFIIF ilə yığılması üçün platforma qurur. .

Nəhayət, TFIIE və TFIIH bu komponentləri birləşdirərək başlatma kompleksi yaradır.  

Sonra, TFIIH başlanğıc sahəsi ətrafında DNT dupleksini açır və RNT polimerazanın C-terminal sahəsini fosforilləşdirir.

Bu fosforiləşmə, polimerazın konformasiyasını dəyişərək, başlanğıc kompleksindən çıxmasına və başlanğıc yerində transkripsiyaya başlamasına imkan verir.  

RNT polimeraz II RNT transkriptini sintez etməyə başladıqdan sonra ümumi transkripsiya faktorlarının çoxu DNT -dən ayrılır.

8.8: Eukaryotik RNT Polimerazlar

RNT Polimeraz (RNAP) bütün heyvanlarda qorunur, bakterial, arxeal və eukaryotik RNAP-lər əhəmiyyətli ardıcıllığı, struktur və funksional oxşarlıqları bölüşür. Üç eukaryotik RNAP arasında RNT Polimeraz II həm struktur təşkili, həm də ferment alt bölmələrinin qatlama topologiyaları baxımından bakterial RNAP-ə ən çox bənzəyir. Lakin bu oxşarlıqlar onların hərəkət mexanizmində əks olunmur.

Hər üç ökaryotik RNAP, TATA bağlayan proteinin hamı üçün ümumi olduğu xüsusi transkripsiya faktorlarına ehtiyac duyur. Bu zülallar, DNT şablonu üzərində RNT sintezinin istiqamətini istiqamətləndirmək üçün RNAP -a bağlı olaraq qalır.

RNAP uzanmağa başladıqdan sonra transkripsiya faktorları DNT-dən sərbəst buraxılır ki, onlar yeni RNT polimeraza molekulu ilə başqa bir transkripsiya raunduna başlaya bilsinlər. RNAP indi DNT şablonuna güclü şəkildə bağlanır və DNT-dən ayrılmadan uzun məsafələr üçün RNT transkriptini sintez etməyə davam edir.

Bakterial genlər tərəfindən kodlaşdırılan sonlandırma siqnallarından fərqli olaraq, RNA Polimeraz II tərəfindən transkripsiya olunan protein kodlayan genlərdə, fermentin dəqiq yerlərdə sona çatmasına yönəlmiş xüsusi ardıcıllıqlar yoxdur. Poly (A) asılı sonluq olaraq bilinən ən ümumi sonlandırma yolu, mRNA transkriptinin poliadenilasyonunu RNAP sonlandırması ilə birləşdirir. Burada, RNA Polimeraz II, gen ardıcıllığının sonundan keçərək bəzən minlərlə baza qədər RNT transkripsiyasını davam etdirərkən, transkript daxili bir yerdə kəsilir. Beləliklə, transkriptin yuxarı hissəsi buraxılır və parçalanmış transkriptin 3-cü ucuna bir poliadenin quyruğu əlavə edilə bilər. Aşağıdakı parçalanma məhsulu, RNA Polimeraz II tərəfindən hələ də transkripsiya olunarkən 5 və#8242-ekzonükleaz tərəfindən həzm olunur. 5 ′-exonulease qalan transkriptin hamısını həzm edərkən, RNAP-ın DNT şablon ipindən ayrılmasına kömək edərək transkripsiyanı tamamlayır.


Gücləndiricilər

Müəyyən E. coli genlər, genişləndirilmiş promotor bölgəsinin yuxarı axınlarını əhatə edir. Ribozomal RNT istehsalı üçün genlər adlanan üç yuxarı axın sahəsinə malikdir Fis saytları çünki onlar Fis adlı zülal üçün bağlanan yerlərdir (Şəkil 11.9). Bu saytlar UP elementinin ucundan –60 ilə –150 aralığına qədər uzanır və adlanan DNT sekanslarının nümunələridir. gücləndiricilər. Gücləndiricilər adlandırılan zülallarla bağlana bilən ardıcıllıqlardır transkripsiya faktorları.



Ökaryotlar transkripsiyanı necə dayandırır? (Campbell Biologiyasına dair aydınlıq) - Biologiya

60 notecards = 15 pages (hər səhifədə 4 kart)

Campbell Biologiya 10 -cu nəşr Fəsil 17

Garrod hipotez etdi ki, alkaptonuriya kimi maddələr mübadiləsinin səhvləri & quot; _____ səbəbiylə meydana gəlir.

A) metabolik fermentlər vitamin kofaktorlarına ehtiyac duyur və təsirlənmiş şəxslərdə əhəmiyyətli qida çatışmazlığı var

B) fermentlər DNT -dən hazırlanır və təsirlənmiş şəxslərdə DNT polimerazası yoxdur

C) müəyyən metabolik reaksiyalar ribozimlər tərəfindən həyata keçirilir və təsirlənmiş şəxslərdə əsas birləşmə faktorları yoxdur

D) genlər spesifik fermentlərin istehsalını diktə edir və təsirlənmiş fərdlərdə müəyyən fermentlərin çatışmazlığına səbəb olan genetik qüsurlar olur

D) genlər xüsusi fermentlərin istehsalını diktə edir və təsirlənmiş şəxslərin müəyyən fermentlərin olmamasına səbəb olan genetik qüsurları var

DNT şablon iplikçikindəki xüsusi üçlü üçlük 5 'AGT 3' dir. Transkripsiya edilmiş mRNA üçün müvafiq kodon _____ -dir.

Genetik kod bütün orqanizmlər üçün eynidir. Buradan məntiqi olaraq aşağıdakılardan hansını təxmin etmək olar?

A) Bir orqanizmdən olan bir gen nəzəri olaraq hər hansı digər orqanizm tərəfindən ifadə edilə bilər.

B) DNT ilk genetik material idi.

C) Fərqli orqanizmlərdə eyni kodonlar fərqli amin turşularına çevrilir.

D) Müxtəlif orqanizmlərdə müxtəlif növ amin turşuları olur.

A) Orqanizmdən gələn geni nəzəri olaraq hər hansı digər orqanizm ifadə edə bilər.

Yuxarıdakı rəqəm sadə bir metabolik yolu göstərir. Beadle və Tatumun hipotezinə görə, bu yol üçün neçə gen lazımdır?

D) Yoldan müəyyən edilə bilməz.

Yuxarıda göstərilən metabolik yollara baxın. Əgər böyümə üçün A, B və C lazımdırsa, A genini kodlayan ferment üçün mutant olan ştam _____ ilə əlavə edilmiş mühitdə inkişaf edə bilər.

Yuxarıda göstərilən metabolik yola baxın. Böyümə üçün A, B və C-nin hamısı lazım olsa, gen kodlayan B fermenti üçün bir mutant _____ ilə tamamlanmış mühitdə inkişaf edə bilər.

Phe-leu-ile-val polipeptid ardıcıllığını kodlayacaq DNT şablon zolağında nukleotidlərin mümkün bir ardıcıllığı _____ olardı.

Aşağıdakı mRNA kodon ardıcıllığına əsaslanaraq hansı amin turşusu ardıcıllığı yaradılacaq?

Yuxarıdakı rəqəmə baxın. Fenilalanini ribosoma daşıyan tRNA üçün antikodon nə olardı?

Aşağıdakılardan hansı tək gen, bir ferment hipotezinə ziddir?

A) Tək gendə olan mutasiya zülalın qüsurlu olması ilə nəticələnə bilər.

B) Alkaptonuriya fərdlərdə homogentis turşusunun katalizində iştirak edən bir fermentin olmaması ilə nəticələnir.

C) Oraq hüceyrəli anemiya qüsurlu hemoglobinlə nəticələnir.

D) Tək bir antikor geni, transkripsiya sonrası baş verən birləşmədən asılı olaraq fərqli əlaqəli zülalları kodlaşdıra bilər.

D) Tək bir antikor geni, transkripsiya sonrası baş verən birləşmədən asılı olaraq fərqli əlaqəli zülalları kodlaşdıra bilər.

Aşağıdakılardan hansı tək bir amin turşusu ilə birbaşa əlaqəlidir?

A) tRNT-nin əsas ardıcıllığı

B) aminasetil tRNT sintaza

C) mRNA-nın üç əsaslı ardıcıllığı

D) DNT və RNT-nin komplementarlığı

C) mRNA-nın üç əsaslı ardıcıllığı

Transkripsiya prosesində, _____.

C) zülallar sintez olunur

D) mRNA ribosomlara bağlanır

Kodonlar _____-in molekulyar strukturunun bir hissəsidir.

Genetik kodun lazımsız olduğunu söylədikdə bu nə deməkdir?

A) Tək kodon birdən çox amin turşusunun əlavə edilməsini təyin edə bilər.

B) Genetik kod orqanizmlərin müxtəlif sahələri üçün fərqlidir.

C) Genetik kod universaldır (bütün orqanizmlər üçün eynidir).

D) Birdən çox kodon eyni amin turşusunun əlavə edilməsini təyin edə bilər.

D) Birdən çox kodon eyni amin turşusunun əlavə edilməsini təyin edə bilər.

Tədqiqatçılar DNT -ni miras vahidi olaraq təyin etdikdən sonra, məlumatın nüvədəki DNT -dən sitoplazmadakı zülal sintezi yerinə necə köçürüldüyünü soruşdular. Eukarotlarda informasiyanın ötürülməsi mexanizmi hansıdır?

A) Tək gendən DNT replikasiya olunur və sitoplazmaya köçürülür və burada zülal sintezi üçün şablon rolunu oynayır.

B) Messenger RNA tək bir gendən transkripsiya edilir və nüvədəki DNT -dən zülal sintezinin reallaşdığı sitoplazmaya məlumat ötürür.

C) Proteinlər məlumatı nüvədən protein sintezinin reallaşdığı ribosoma ötürür.

D) Transfer RNT, DNT -dən zülal sintezinin reallaşdığı bir ribozoma məlumat alır.

B) Messenger RNT tək gendən transkripsiya edilir və məlumatı nüvədəki DNT-dən zülal sintezinin baş verdiyi sitoplazmaya ötürür.

Mərkəzi dogma görə, boşluqda hansı molekul getməlidir?

Kodonlar, tək bir amin turşusunun əlavə olunmasını təyin edən üç əsaslı ardıcıllıqlardır. Ökaryotik kodonlar və prokaryotik kodonları necə müqayisə edirlər?

A) Prokaryotik kodonlarda adətən eukaryotlardan fərqli əsaslar olur.

B) Prokaryotik kodonlar adətən eukariotlardan fərqli amin turşularını təyin edir.

C) Kodonların tərcüməsi eukariotlarda tRNT-lər vasitəsilə həyata keçirilir, lakin tərcümə üçün prokaryotlarda tRNT kimi ara molekullar tələb olunmur.

D) Kodonlar bütün orqanizmlər arasında demək olar ki, universal bir dildir.

D) Kodonlar bütün canlılar arasında demək olar ki, universal bir dildir.

Aşağıdakılardan hansı prokaryotlarda olur, amma eukaryotlarda olmur?

A) transkripsiyadan sonrakı splaysinq

B) paralel transkripsiya və tərcümə

C) ribosom olmadıqda tərcümə

B) paralel transkripsiya və tərcümə

Aşağıdakı ifadələrdən hansı prokariotlarda transkripsiyanın dayandırılmasını ən yaxşı izah edir?

A) RNT polimeraz, poliadenilasyon siqnalı vasitəsilə transkripsiya edərək zülalların transkriptlə birləşməsinə və polimerazadan azad olmasına səbəb olur.

B) RNT polimeraz terminator ardıcıllığı ilə transkripsiya edir və polimerazanın DNT -dən ayrılmasına və transkriptin sərbəst buraxılmasına səbəb olur.

C) Transkripsiya başladıqdan sonra, RNT polimeraz xromosomun sonuna çatana qədər transkripsiya edir.

D) RNT polimeraz, dayanma kodonu vasitəsilə transkripsiya edir, bu da polimerazın gen vasitəsilə irəliləməsini dayandırmağa və mRNA -nı sərbəst buraxmağa səbəb olur.

B) RNT polimeraz terminator ardıcıllığı ilə transkripsiya edir və polimerazanın DNT -dən ayrılmasına və transkriptin sərbəst buraxılmasına səbəb olur.

Eukariotlarda bir neçə fərqli RNT polimeraz növü var. Qlobin zülalı üçün mRNT-nin transkripsiyasında hansı növ iştirak edir?


Qısa RNAPII transkriptlərinin ləğvi

Spliceosomal snRNA -lar

Məməlilərin RNAPII tərəfindən transkripsiya olunmuş spliceosomal snRNAs (U1, U2, U4 və U5) intronsuz və poliadenil olmayan kodlaşdırılmayan RNT-lərdir. 3'-uclarının meydana gəlməsi xüsusi snRNA təşviqçilərindən asılıdır, lakin histon mRNA-ları kimi bir poli (A) saytına və ya HDE-yə ehtiyac yoxdur, əksinə olgun 3 'ucundan 9-19 nt aşağıda yerləşən 3'-qutulu bir elementə ehtiyac yoxdur. snRNAs (de Vegvar et al. 1986 Hernandez və Weiner 1986). 3'-qutu, snRNA-ların düzgün transkripsiyası üçün vacibdir və U1 və U2 snRNA-larının 3'-sonlu işlənməsi üçün lazım olduğu göstərilmişdir (Cuello və digərləri 1999). 3 'qutusundan aşağı axında endonükleolitik parçalanmadan sonra, snRNA'lar sitoplazmaya ixrac edildikdən sonra kəsilmiş uzadılmış 3' ucunu daşıyır (nəzərdən keçirmək üçün Egloff və digərlərinə baxın. 2008).

Protein kodlayan genlər kimi, RNAPII CTD də U1 və U2 snRNA-larının transkripsiyası və 3'-emalı üçün lazımdır (Uguen və Murphy 2003). CTD kəsmə və CTD kinaz inhibitorları U2-nin 3'-qutu tanınmasına təsir göstərir, lakin transkripsiyanın sonlandırılmasına təsir göstərmir (Medlin və digərləri 2003 Jacobs və digərləri 2004). Medlin və başqaları. (2005) göstərdi ki, P-TEFb və həm Ser2, həm də Ser5-in fosforilasiyası 3′-qutunun transkripsiya ilə tanınması üçün tələb olunur. Maraqlıdır ki, CTD-nin Ser7-nin fosporilasiyası İnteqrator kompleksinin işə götürülməsi və buna görə də snRNA-ların transkripsiyası və işlənməsi üçün tələb olunur (Egloff et al. 2007). Integrator, bəzi CPSF alt bölmələrinin homologlarını ehtiva edən və snRNA-dan əvvəl 3'-sonda meydana gəlməsində rol oynadığı böyük bir kompleksdir (Baillat et al. 2005). CPSF-73 homologu, Int11/RC-68, Ser7-də fosforiləşmiş CTD ilə qarşılıqlı təsir göstərir. Alan7 -yə Ser7 -nin mutasiyası spRN -lərin 3 ′ emalına təsir edir, lakin mRNA -ları kodlaşdırmır (Chapman və digərləri 2007 Egloff və digərləri 2007).

SnRNA-ların 3'-ucları, endonükleolitik parçalanma ilə, katalitik bir β-laktamaz sahəsini və çox ehtimal ki, Integrator kompleks komponentinin polipeptidlərindən birini ehtiva edən bir endonukleaz tərəfindən, Int11/RC-68 (Baillat və digərləri 2005 Dominski) tərəfindən əmələ gəlir. və s. 2005b). Int11/RC-68, CPSF-100 ilə əlaqəli olmadıqları üçün CPSF-100, Int9/RC-74-ün görünən homologu ilə qarşılıqlı əlaqə qurur, CPSF-dən fərqli bir kompleks meydana gətirir (Dominski və digərləri 2005b). SiRNA ilə Int11-in tükənməsi və ya onun katalitik aktivliyinin mutasiya ilə inaktivasiyası U1 və U2 3′-end emalında qüsur aşkar etdi (Baillat et al. 2005). Lakin, Int11 -in inaktivasiyası transkripsiyanın dayandırılmasına mane olmurdu.

3'-qutuların olmasına baxmayaraq, snRNA genləri ümumi bir sonlandırma prosesindən istifadə etmirlər. U1 genlərinin transkripsiyası 3′-qutuya yaxın bitdiyi halda (Cuello et al. 1999), U2 transkripsiyası onun yetkin 3′-ucundan ~1 kb-ni bitirir (Medlin et al. 2003). Naməlum bir sonlandırma faktoru və ya kompleksi, U1 prekürsoru RNA-nı 3-qutusundan dərhal aşağıya doğru G yolunda bağlayır, yalnız T uzanmasının yuxarı tərəfindədir (Cuello et al. 1999). Bu potensial terminator bağlayan bölgə U2 3′ qutusundan aşağı axınla yerləşdirildikdə, transkripsiyanın effektiv dayandırılmasına gətirib çıxarır. Ancaq U2 -nin təbii terminator bölgəsi ətrafında belə bir ardıcıllıq müəyyən edilməmişdir. Bu təcrübələr, snRNA transkripsiyasının sonlandırılmasının genə xas faktor və mexanizmləri əhatə edə biləcəyini göstərir, lakin detallar aydın deyil.

3′-qutu mRNT kodlayan genlərdəki poli(A) siqnalı ilə müqayisə oluna bilər, çünki onların hər ikisi effektiv parçalanma və sonlanma üçün tələb olunur. Xrn2-nin snRNA genləri ilə əlaqəsinə dair hələ heç bir dəlil yoxdur, lakin xitamın aşağı axın məhsulunun deqradasiyası ilə baş verdiyini düşünmək olar, ən azı U2 xitamında. Maya snRNA transkripsiyasının sona çatması, daha sonra müzakirə ediləcək snoRNA sonlandırılması üçün istifadə olunan eyni yolu əhatə edir.

Maya sno/snRNAs

SnoRNA-ların əksəriyyəti struktur və funksional olaraq yaxşı müəyyən edilmiş iki sinifə bölünür. Qorunmuş qutu C və D elementlərini daşıyan SnoRNAlar əsasən sahəyə xas 2′ -də bələdçi rolunu oynayır.O-Hədəf RNT -lərin metilasiyası, H/ACA qutusu snoRNA -ları isə birbaşa pseudouridilasyon. Bəzi snoRNA-lar rRNA-dan əvvəl emalı üçün tələb olunsa da, snoRNA-ların əksəriyyəti pre-rRNA-ların modifikasiyalarına rəhbərlik edir (Kiss 2002). Məməlilərdə bu son snoRNA-lar pre-mRNA-ların intronları daxilində kodlanır (Richard və Kiss 2006), insanlarda pre-rRNA işlənməsində iştirak edən snoRNA-lar və mayada ifadə olunan bələdçi RNT-lərin çoxu öz təşviqçilərindən RNAPII tərəfindən yazılır. .

Endoribonukleaza Rnt1 (maya RNase III) tərəfindən parçalandıqdan və ya intronlardan ayrıldıqdan sonra snoRNT prekursorlarının 3′-ucları ekzosom vasitəsilə ekzonükleolitik kəsmə yolu ilə yetişir. Bəzi hallarda, müstəqil olaraq transkripsiya edilmiş snoRNA-larda, Rnt1 tərəfindən tanınan və mRNA 3'-uclu formalaşma maşınları tərəfindən endonükleolitik parçalanmaya məruz qala bilən RNA hairpin strukturları yoxdur (Fatica et al. 2000 Morlando et al. 2002). Ayrılmadan sonra, spesifik faktorların yazılı birləşməsi və sn/snoRNP-lərin əmələ gəlməsi, sn/snoRNA-nın yetkin 3'-ucunu ekzonükleolitik kəsilmədən qoruyur (Morlando və digərləri 2004 Ballarino və digərləri 2005 Yang və s. 2005 Houalla et al. 2006 ).

Maya snoRNA işlənməsinə və sonlanmasına mRNA 3'-son emal faktorlarının cəlb edilməsi

SnoRNA-lar və snRNA-lar poliadenilləşmir. Bununla birlikdə, parçalanma/poliadenilasyon maşınlarından ümumi faktorlar tələb olunur (Fatica et al. 2000 Morlando və s. 2002) və beləliklə parçalanma poliadenilasyondan ayrılmamalıdır. Bölünmə faktorları, əslində, sno/snRNA -ların düzgün dayandırılması və işlənməsi üçün tələb olunur (bax. Şəkil. 2 Morlando və s. 2002 Carneiro və digərləri 2008). Bundan əlavə, APT kompleksi (Pta1 [symplekin homologu] ilə əlaqəli) parçalanma/poliadenilasyon maşınlarının bir alt kompleksindəki mutasiyalar, müəyyən sn/snoRNA genlərinin oxunan transkripsiyasına səbəb olur (Dheur və digərləri 2003 Ganem və digərləri 2003 Nedea et al.2003 Steinmetz və Brow 2003 Kim et al. 2006 Ghazy et al. 2009). Sn/snoRNA-nın sonlandırılmasında rol oynayan APT faktorları, snoRNP-spesifik protein Nop1 (Morlando və digərləri 2004) ilə qarşılıqlı əlaqədə olan Rna14 Ref2-ni bağlayan CstF-64-ün ikinci maya homologu Pti1-i ehtiva edir (Morlando və s. 2004) CTD fosfataza Ssu72 (Ganem et al. 2003 Steinmetz və Brow 2003 Kim et al. 2006) və eyni zamanda Set1 kompleksinin bir hissəsi olan Swd2 (Cheng et al. 2004 Dichtl et al. 2004). Pti1-in həddindən artıq ifadəsi, parçalanmaya təsir etmədən poliadenilasyonu maneə törədir, bu da Pti1-in snoRNA 3′-ucunun əmələ gəlməsi zamanı parçalanma və poliadenilasiyanı ayırmaqda işləyə biləcəyini göstərir (Dheur et al. 2003).

SnoRNA genlərində maya RNAPII sona çatması. Əsas sonlanma yeri olan I terminatorunda (TI) xitam, Nrd1-dən asılıdır. Nrd1 kompleksi Ser5-fosforilləşdirilmiş CTD və TRAMP və ekzosom kompleksləri ilə qarşılıqlı əlaqədə olur. Parçalanma/poliadenilasiya aparatına (CPF və CFIA) TI-də (bulanıq komplekslər şəklində çəkilmiş) xitam verilməsi tələb olunmur. II terminatorda (TII) xitamlanma parçalanma/poliadenilləşmə faktorlarını əhatə edir, Nrd1-TRAMP-ekzosom kompleksi isə bu prosesdə qeyri-aktiv görünür (tulan komplekslər). SnoRNA transkripsiyası RNT nəzarəti ilə cütləşir. Prekursorun buraxılmasından sonra Trf4 və Pap1 ekzosom tərəfindən işlənəcək pre-snoRNT-ni adenilat edir. SnoRNA-nın dayandırılmasında rolu olduğu göstərilən digər amillər göstərilir. Bunlara Pcf11, Paf1C və RNAPII alt bölmələri Rpb3 və Rpb11 daxildir.

Lakin snoRNA-nın kəsilməsində pre-mRNT transkriptlərinin 3′ emalında/xitamında iştirak edən amillərin rolu aydın deyil. ChIP təcrübələri, bir neçə snoRNA genində Rat1, Rna15 və Rna14 daxil olmaqla mRNA parçalanma faktorlarının və APT kompleksinin alt hissələrinin olduğunu göstərsə də, təəccüblü olaraq heç bir sonlanma qüsuru aşkar edilməmişdir. RAT1 və ya RNA14 mutant suşları (Kim et al. 2006). Normal snoRNA sona çatması Rnt1 və ya nüvə ekzozom komponenti Rrp6 olmayan suşlarda da meydana gəldi (Kim və digərləri 2006). Kim və s. (2006), həm də CPSF-73 homologu Ysh1-in tükənməsi və ya mutasiyasına görə, snoRNA-nın kəsilməsi üçün parçalanma/poliadenilasiya aparatı ilə parçalanmanın lazım olmadığını göstərdi. PCF11 bölünmənin bloklanması snoRNA -nın kəsilməsinə təsir göstərməyib. Bununla birlikdə, transkripsiyanın oxunması ifadə olunan suşlarda görüldü PCF11 CTD -ni bağlaya bilməyən mutantlar və Garas et al. (2008) spesifik snoRNA genlərində sonuncunun müəyyən bir soyuq həssaslıqda qüsurlu olduğunu göstərdi YSH1 mutant gərginlik. Maraqlıdır ki, mRNA xitamında göstərildiyi kimi, Steinmetz et al. (2006a) heterodimer Rpb3/11 -in dəyişməsinin snoRNA -ların sona çatmasını pozduğunu müşahidə etdi. mRNA-nın dayandırılması ilə bağlı başqa bir ümumi nöqtə, 3′-end emalında iştirak edən zülallara əlavə olaraq, Paf1C-nin snoRNA-nın dayandırılmasında iştirak etməsidir. Paf1C-dəki qüsurlar snoRNA terminatorlarında oxunan transkripsiyaya səbəb olur (Sheldon et al. 2005). ChIP təcrübələri, Paf1C-nin Nrd1-i işə götürməklə snoRNA-ların 3′-sonunun formalaşmasını asanlaşdıra biləcəyini təklif etdi (aşağıya bax) (bax. Şəkil 2 Sheldon et al. 2005).

Yuxarıdakı nəticələr göstərir ki, snoRNA genləri transkripsiyanı dayandırmaq üçün müxtəlif yollardan istifadə edir, çünki mRNT-nin dayandırılmasında iştirak edən amillərin mutasiyaları və ya tükənməsi yalnız snoRNA genlərinin alt çoxluğuna təsir göstərir. Bu genlər arasındakı fərqlərin əsasında nəyin dayandığını anlamaq üçün əlavə araşdırmalara ehtiyac olacaq.

Nrd1 kompleksi

Pre-mRNA 3′-sonlu emal ilə paylaşılan faktorların aşkar iştirakına baxmayaraq, sno/snRNA-nın dayandırılması xüsusi bir amilə, Nrd1 kompleksinə əsaslanır. Nrd1 (nüvə pre-mRNA aşağı tənzimlənməsi) qarşılıqlı təsir edən bir zülal olan helikaz Sen1 ilə birlikdə snoRNA və bəzi mRNA transkriptlərinin dayandırılmasını istiqamətləndirən əsas nüvə RNT-ni bağlayan zülaldır (Steinmetz və Brow 1996 Steinmetz et al. 2001s al.2004 Vasiljeva və Buratowski 2006). Nrd1, Ser5 -də fosforiləşmiş CTD ilə qarşılıqlı əlaqədə olan CID (Meinhart və Cramer 2004 Meinhart et al. 2005) ehtiva edir (Conrad və s. 2000 Gudipati və digərləri 2008 Vasiljeva və digərləri 2008a). Nrd1 həmçinin digər vacib RNT-ni bağlayan zülal Nab3 ilə qarşılıqlı əlaqədə olur (Yuryev et al. 1996).

Nrd1, Nab3 və Sen1, əsasən promotor bölgələrdə snoRNAs genlərində (Kim və s. 2006) ChIP tərəfindən aşkar edilən Nrd1 kompleksini meydana gətirir (Kim və s. 2006). Əhəmiyyətlisi, NRD1SEN1 mutasiyalar bəzi snoRNA -larda güclü sonlanma qüsurlarına səbəb olur (Kim və digərləri 2006). Nrd1 və Nab3, sn/snoRNA-ların (GUAA/G və UCUU sırasıyla) 3'-ucundan aşağı axında yerləşən xüsusi RNA ardıcıllığını tanıyır (Steinmetz və Brow 1996, 1998 Conrad et al. 2000 Steinmetz et al. 2001 Carroll et al. 2004, 2007) və bu saytlardakı mutasiyalar sonlanma qüsurlarına səbəb olur (Carroll et al. 2004). Bir neçə snoRNA terminatoru, bir heterodimer meydana gətirən Ndr1 və Nab3 üçün çoxlu potensial bağlama yerləri ehtiva edir (Carroll və digərləri, 2007). Nrd1 həmçinin ekzosom kompleksini işə götürə bilər, Nrd1 sonlanma yolunu ekzosomdan asılı kəsmə və ya transkriptlərin deqradasiyasına birləşdirə bilər (Şəkil 2 Vasiljeva və Buratowski 2006).

A-da RNAPII paylanmasının genom analizi SEN1 mutant suşu, snoRNA -ların (Ursic et al. 1997 Rasmussen və Culbertson 1998) və digər qısa transkriptlərin (Steinmetz et al. 2006b) Sen1 -in iştirakını təsdiqlədi. ChIP analizi a. snoRNA genlərinin əksəriyyətində RNAPII-nin oxunduğunu göstərdi SEN1 mutant ştamm və ya onun helikaz fəaliyyəti üçün qüsurlu deformasiya (Kim et al. 2006 Steinmetz et al. 2006b). Sen1 CTD ilə assosiasiya olunur və həmçinin bir neçə snoRNA və bəzi snRNA ilə birlikdə çökür (Yuryev et al. 1996 Ursic et al. 1997, 2004). Nedea və başqaları. (2008) göstərdi ki, maya PP1 (protein fofataza-1) katalitik alt bölməsi olan Glc7 həm də Sen1 ilə birbaşa qarşılıqlı əlaqədə olan snoRNA-nın kəsilməsinin tənzimləyicisidir. TAP etiketli Sen1-in təmizlənməsi Glc7, Nab3, Nrd1 və bütün snoRNP əsas zülallarını Sen1 ilə əlaqəli zülallar kimi müəyyən etdi (Nedea et al. 2008). Sen1 -Glc7 -Nab3 -Nrd1 -in Sen1 -in in vitro Senfosforilat göstərdiyi Nab3 və Glc7 ilə birbaşa qarşılıqlı əlaqədə olduğu sabit bir kompleks meydana gətirməyi təklif edirlər. Məməlilərdə Glc7 (He and Moore 2005) və PP1-in (Shi et al. 2009) mRNA 3'-sonu meydana gəlməsində işlədiyi bilinir və bütün bu proseslərdə deposforiliyin dəqiq rollarını aydınlaşdırmaq maraqlı olacaq.

Bəzi snoRNA terminatorları böyük (terminator I) Nrd1-bağlayıcı asılı terminatoru və parçalanma və poliadenilasyon siqnallarına bənzər xüsusiyyətlərə malik ikinci, aşağı axın terminatoru (terminator II) ilə iki tərəfli görünür (Şəkil 2 Fatica və digərləri 2000 Morlando et. başqaları 2002 Steinmetz and Brow 2003 Steinmetz et al. 2006a). Səmərəli sonlandırmaq üçün hər iki terminator tələb olunur. Maraqlıdır ki, snoRNA terminatoru təbii poli(A) sahəsinin yuxarı axınında, zülal kodlayan genin 3′ tərcümə olunmamış bölgəsinə (UTR) yerləşdirildikdə poliadenilasiyaya səbəb ola bilər (Steinmetz et al. 2006a). Bu məlumatlar gen kontekstindən asılı olaraq snoRNA terminatorlarının birbaşa poliadenilləşmə potensialına malik olduğunu göstərir. Əvvəlki məlumatlar, həqiqətən də, bəzi sn/snoRNA prekursorlarının ekzosom qüsurlu maya ştammında poliadenilasiya olduğunu bildirmişdir (van Hoof et al. 2000 Egecioglu et al. 2006). Buna görə, bir gərginlik üçün silindi RRP6 natamam işlənmiş C/D-box snoRNA prekursorlarının 3'-ucunda birdən dördə qədər adenin olduğunu göstərdi (Grzechnik və Kufel 2008). Trf4/5 (TRAMP kompleksindən PAP -lar) I terminatorda adeninlər, hər iki terminatorda isə kanonik poli (A) polimeraza, Pap1, snoRNA prekursorları əlavə edir. SnoRNA-nın oxunması və TRAMP-qüsurlu ştammda I terminatorunda Nrd1 işə götürülməsindəki qüsurlar göstərir ki, TRAMP kompleksi Nrd1-in snoRNA genləri ilə uyğun əlaqəsi və buna görə də xitam verilməsi üçün vacibdir. Grzechnik və Kufel (2008) belə nəticəyə gəldilər ki, Trf4 və Pap1 ilə poliadenilləşmə ekzosom tərəfindən 3′-ucunun əmələ gəlməsini stimullaşdıran snoRNA-nın dayandırılması ilə əlaqəli normal bir mexanizmdir (Şəkil 2).

SnRNA-ların və snoRNA-ların transkripsiyasının dayandırılmasının tənzimlənməsi transkripsiyanın hər bir addımında iştirak edən çoxlu sayda amilləri əhatə edir. MRNA və snoRNA sonlanma yolları arasında bir çox amillər paylaşılır və ikisini düzgün və səmərəli şəkildə ayırmaq üçün sıx bir tənzimləmə şəbəkəsi lazımdır. Sonlandırmanın əhəmiyyətli bir xüsusiyyəti, RNAPII -nin terminatora çatdıqda keçdiyi məsafə kimi görünür. Nrd1 kompleksi qısa transkriptlərin transkripsiyasında iştirak edir (Steinmetz et al. 2006b). Aşağıda izah edildiyi kimi, bu tənzimləmə CTD fosforilasyonunun fərqli mərhələlərini əks etdirir. Digər tərəfdən, snoRNA-ların potensial poliadenilasiyası RNT nəzarəti, işlənməsi və dayandırılması ilə əlaqəli başqa bir mürəkkəblik dərəcəsi əlavə edir və daha tam şəkildə araşdırılmalıdır.

Nrd1 kompleksinin gen ifadəsində daha geniş rolu

Son məlumatlar göstərir ki, Nrd1 kompleksinin funksiyası snoRNA 3′-sonunun formalaşması və dayandırılması ilə məhdudlaşmır. Nrd1 kompleksi gen ifadəsində, xüsusən də CUT-ların sintezində/emalında daha geniş funksiyalara malikdir. CUTs, RNT nüvə deqradasiyası üçün qüsurlu maya suşlarında genom geniş mikroarray analizi ilə ilk dəfə aşkar edilən qısa kodlaşdırılmayan RNT-lərdir (300-600 nt) (Kapranov və digərləri 2005 Wyers və digərləri 2005 David və digərləri 2006 Davis və Ares 2006) . Nüvə ekzozom zülalı Rrp6 üçün qüsurlu suşlarda, müəyyən edilmiş 5′-uclu və heterojen 3′-uclu CUT-lar yığılır. Bu transkriptlərin maya intergenik bölgələrinin 10% -dən qaynaqlandığı təxmin edilir (Wyers və digərləri 2005, baxmayaraq ki, bax Neil və digərləri. 2009 və Xu və digərləri. 2009). RNAPII tərəfindən Nrd1-ə bağlı xitam edildikdən sonra, CUT-lar TRAMP kompleksi tərəfindən sürətlə poliadenilləşir və sonra nüvə ekzosom tərəfindən deqradasiya olunur (Wyers et al. 2005 Arigo et al. 2006b Houalla et al. 2006 Thiebaut et al. 2006). Bu yaxınlarda, Gudipati et al. (2008) CUT-lərin Nrd1-ə bağlı sonlandırılmasının Ser2-də CTD fosforiləşməsi ilə inhibə edildiyini və Ser5 fosforlaşması ilə təşviq edildiyini göstərdi. Onlar həmçinin göstərdilər ki, Nrd1-in yeni yaranan transkriptlə bağlanması, kifayət qədər olmasa belə, effektiv xitam üçün zəruridir. Müvafiq olaraq, Vasiljeva et al. (2008a) göstərdi ki, Nrd1 Ser5 və Ser5/Ser2 -də fosforiləşmiş CTD üçün yüksək yaxınlığa malikdir. Əlavə olaraq, Nrd1 -in bir snoRNA və ya mRNA geni ilə birləşməsi Ser2 fosforiliyinin inhibe edilməsindən təsirlənmir.

Gudipati və başqalarının tədqiqatları. (2008) və Vasiljeva et al. (2008a) sonlandırmanın RNAPII -nin keçdiyi məsafədən nə ilə bağlı olduğunu və RNAPII -nin mRNA -nın sonlandırılması üçün 3 'bölünmə və poliadenilasyon yolu ilə kodlaşdırılmayan RNT -lər, qısa ORF -lər və CUT sonlandırılması üçün Nrd1 kompleksi arasında necə seçildiyini izah edir. Qısa transkriptlər əsasən Nrd1 kompleksini cəlb edən Ser5 fosforilasiyası ilə əlaqələndirilir. Əksinə, daha uzun transkriptlər (əksər mRNA) əsasən genin 3′-ucundakı Ser2 fosforilasiyası ilə əlaqələndiriləcək, bu da Pcf11 və Rtt103-ü işə götürərək Rat1 funksiyasını asanlaşdıracaq (Rondon et al. 2008). SnoRNA genlərinin II terminatorunda parçalanma/poliadenilasyon faktoru yolunun necə tənzimləndiyini anlamaq üçün əlavə tədqiqatlara ehtiyac olacaq. Bu terminator promouterdən daha böyük məsafədə olduqda belə, bu məsafə adətən terminator I-dən <100 bp-dir.

Bəzi CUT'lar bitişik gen aktivliyini nəzarət etməklə tənzimləyici funksiyanı yerinə yetirirlər (Martens və digərləri 2004 Steinmetz et al. 2006b). Məsələn, tənzimləmə bölgəsi SER3 gen transkripsiyasını repressiya edən bir CUT istehsal edir SER3 (Martens et al. 2004). Nrd1 kompleksdən asılı olan sonlandırmanın, üç xarakterli protein kodlayan genin 5'-UTR-də yerləşən "zayıflatıcılar" adlanan tənzimləyici terminatorları tanıdığı göstərildi-NRD1, HRP1 (və ya NAB4) və IMD2 (Steinmetz et al. 2001, 2006b Arigo et al. 2006a Kuehner və Brow 2008). Zülal kodlayan genlərin mRNA başlanğıc sahəsinin yuxarı axınında başlayan kodlaşdırılmayan RNT-lərin sona çatması onların ifadəsini tənzimləyir. Məsələn, Nrd1 və Nab3-ün 5′-UTR və yuxarı axın kodlaşdırma bölgəsinə bağlanması NRD1 Nrd1 səviyyələrinin mənfi autoregulyasiyası ilə nəticələnən vaxtından əvvəl sona çatmağı istiqamətləndirir (Steinmetz et al. 2001 Arigo et al. 2006a). Eynilə, CUT -lərin dayandırılması da yuxarıya doğru başladı IMD2 mRNA başlanğıc yerini tənzimləyir IMD2 mRNA ifadəsi (Jenks et al. 2008 Kuehner və Brow 2008 Thiebaut et al. 2008). Hər üç zayıflatıcı içindəki mutasiyalara həssasdır SEN1RPB11, Rpb3/11 heterodimerinin sonlanmada əhəmiyyətini göstərən əvvəlki tədqiqatlara uyğundur (Steinmetz et al. 2006a).

Nrd1 -TRAMP/exosome kompleksinin gen ifadəsində geniş rolu olduğu görünür. CUTs, mRNA ifadəsinin tənzimlənməsi üçün əhəmiyyətli görünən Nrd1 kompleksi tərəfindən idarə olunan RNT -lərin bir nümunəsini təqdim edir. Ekzosom və TRAMP alt vahidlərinin insan homoloqlarının mövcudluğuna baxmayaraq, insanlarda belə bir RNT keyfiyyəti və gen ifadəsinə nəzarət yolu üçün hələ də məhdud sübutlar mövcuddur (Houseley et al. 2006 Kapranov et al. 2007 Vanacova and Stefl 2007). Bununla birlikdə, West et al. (2006a) 5 ′ məhsullarının olduğunu göstərdi β-qlobin CoTC-də parçalanma nəticəsində yaranan transkripsiya tez-tez qısa A quyruğu ehtiva edir və Rrp6 insan homologunun siRNA vasitəsi ilə tükənməsi ilə yığılır. Ancaq daha da əhəmiyyətlisi, bu yaxınlarda insan genomunda naməlum funksiyaya malik yeni kodlaşdırılmayan RNT-lər aşkar edilmişdir (Kapranov et al. 2007). Bu RNT-lərin rolunu aydınlaşdırmaq və onların gen ifadəsində işləyib-işləmədiyini aşkar etmək üçün əlavə tədqiqatlara ehtiyac olacaq.


Ökaryotlar transkripsiyanı necə dayandırır? (Campbell Biologiyasına dair aydınlıq) - Biologiya

DNT polimeraza III funksiyası nədir?

Artan bir DNT zəncirinin sonuna nukleotidlər əlavə etmək.

Bir amin turşusunu təyin edən 61 mRNT kodonu var, ancaq yalnız 45 tRNA. Bu ən yaxşı faktla izah olunur

A) bəzi tRNA -larda dörd və ya daha çox fərqli kodonu tanıyan antikodonlar var.

B) bir kodonun üçüncü bazası ilə tRNA arasındakı əsas cütləşmə qaydaları çevikdir.
C) bir çox kodon heç vaxt istifadə edilmir, buna görə də onları tanıyan tRNA -lar yayılır.

D) bütün 61 tRNT üçün DNT kodlar, lakin bəziləri daha sonra məhv edilir.

E) rəqabət istisnası bəzi tRNA -ları nukleazalar tərəfindən məhv edilməsinə məcbur edir.

Bir hüceyrə histon zülalları istehsal edə bilməsəydi, aşağıdakılardan hansı ehtimal olunan bir təsir olardı?
A) Santrifüj zamanı istehsal olunan & quot; peyk & quot; DNT miqdarında artım olacaq.
B) Hüceyrənin DNT -sini nüvəsinə yığmaq mümkün deyildi.
C) Profil zamanı mil lifləri əmələ gəlməyəcək.
D) Digər genlərin gücləndirilməsi histon çatışmazlığını kompensasiya edərdi.
E) Hüceyrədə azalmış zülalın kompensasiyası üçün psevdogenlər transkripsiya ediləcəkdi.

Hansı ferment DNT zolağının 5 'və 3 -cü istiqamətdə uzanmasını kataliz edir?

ring splicing, spliceosomun hansı molekulyar komponenti eksizyonu kataliz edir?

Telomerazı olmayan eukaryotik hüceyrədən hansını gözləyirsiniz?
A) xərçəngə tutulma ehtimalı yüksəkdir
B) Okazaki fraqmentlərinin istehsalı
C) timin dimerlərini bərpa edə bilməməsi
D) xromosom uzunluğunun azalması
E) günəş işığına yüksək həssaslıq

Bakteriyalardakı transformasiyanı necə izah edirik?

Hüceyrələrin faj DNT molekulu ilə infeksiyası.

Çərçivə dəyişikliyi mutasiyasının nəticəsi ola bilər
A) yalnız əsas daxiletmə.
B) yalnız əsas silinmə.
C) yalnız əsas əvəzetmə.
D) ardıcıl üç əsasın silinməsi.
E) bazanın ya daxil edilməsi, ya da silinməsi

Elm sərgisi layihəsi üçün iki tələbə dəyişiklik edərək Hershey və Chase təcrübəsini təkrar etməyə qərar verdi. Fosfat deyil, DNT -nin azotunu etiketləməyə qərar verdilər. Onlar hesab edirdilər ki, hər nukleotiddə yalnız bir fosfat və iki-beş azot var. Beləliklə, azotların etiketlənməsi fosfatların etiketlənməsindən daha güclü bir siqnal təmin edərdi. Niyə bu təcrübə işləməyəcək?

Amin turşuları (və beləliklə, zülallar) da azot atomlarına malikdir, buna görə də radioaktivlik DNT və zülallar arasında fərq qoymur.

Aparıcı və geridə qalan tellər bununla fərqlənir

aparıcı zəncir replikasiya çəngəlinin hərəkəti ilə eyni istiqamətdə, geridə qalan tel isə əks istiqamətdə sintez olunur.

Bir orqanizmdən alınan DNT nümunəsindəki nukleotidlərin 42% -ni sitozin təşkil edir. Bu nümunədəki nukleotidlərin təxminən neçə faizi timin olacaq?

Aşağıdakı material dəstlərindən hansı həm eukariotlar, həm də prokaryotlar tərəfindən replikasiya üçün tələb olunur?
A) cüt telli DNT, 4 növ dNTP, primer, mənşə
B) topoizomerazlar, telomerazalar, polimerazalar
C) G-C ilə zəngin bölgələr, polimerazalar, xromosom nikləri
D) nukleosomların boşaldılması, 4 dNTP, 4 rNTP
E) liqaza, primerlər, nukleazlar

Təcrübəli vəziyyətdə, tələbə tədqiqatçı 5' qapağı və poli(A) quyruğunu çıxardıqdan sonra eukaryotik hüceyrəyə mRNT molekulu daxil edir. Aşağıdakılardan hansını tapacağını gözləyərdiniz?
A) mRNT çevrilmək üçün nüvədən çıxa bilmədi.
B) Hüceyrə quyruğun olmamasını tanıyır və mRNA -nı poliadenilatlayır.
C) Molekula nüvədəki məhdudlaşdırıcı fermentlər tərəfindən həzm olunur.
D) Molekul artıq 5 'ucunda qorunmadığı üçün ekzonukleazalar tərəfindən həzm olunur.
E) Molekula ribosoma bağlanır və tərcümə olunur, lakin daha yavaş.

Bir buraxma faktorunun (RF) funksiyası nədir?

Buraxılış faktoru mRNT ardıcıllığında son kodon və ya dayandırma kodonunu tanımaqla tərcümənin dayandırılmasına imkan verən zülaldır.

Azotlu əsas adenin hansı qrupun bütün üzvlərində olur?
A) zülallar, trigliseridlər və testosteron
B) zülallar, ATP və DNT
C) ATP, RNT və DNT
D) alfa qlükoza, ATP və DNT
E) zülallar, karbohidratlar və ATP

Modelini tamamladıqdan sonra Watson və Crickə məlum oldu ki, DNT molekulu çoxlu miqdarda irsi məlumatları daşıyır.
A) əsasların ardıcıllığı
B) fosfat-şəkər bel sümükləri
C) əsasların tamamlayıcı qoşalaşması
D) azotlu əsasların yan qrupları
E) müxtəlif beş karbonlu şəkərlər

Aşağıdakılardan hansı DNT zəncirlərini replikasiya zamanı bir-birindən ayırmağa kömək edir?


3′ Sonundan Antisens Transkripsiya Başlama Mexanizmləri GAL10 Kodlaşdırma Sırası Vivo -da

Şəkil 1 RNA polimeraz II -nin 3 ′ ucunda antisens başlanğıc yeri ilə əlaqəsinin təhlili GAL10 kodlaşdırma ardıcıllığı. (A) Astar cütlərinin (A, B və C bölgələri) yerlərini göstərən şematik diaqram GAL1, GAL10GAL7 ChIP təhlili üçün lokuslar. A, B və C bölgələri ərazidə yerləşir GAL7 əsas təşviqçi, 3 'sonu GAL10 kodlaşdırma ardıcıllığı və yuxarıdakı aktivləşdirmə ardıcıllığı (UAS) GAL10-GAL1 müvafiq olaraq ikitərəfli təşviqatçı. Nömrələr translyasiya dayandırma kodonunun mövqeyinə görə təqdim olunur GAL10. (B) RNT polimeraza II 3′ ucu ilə əlaqələndirilir GAL10 dekstroz tərkibli böyümə mühitində kodlaşdırma ardıcıllığı (B bölgəsi). RNT polimeraz II-nin Myc epitopu ilə işarələnmiş ən böyük alt bölməsini (Rpb1p) ifadə edən maya ştammı YPD mühitində OD-yə qədər böyüdüldü.600 Formaldehid əsaslı 30 ° C-də 1.0 in vivo çarpaz əlaqə. ChIP analizi Materiallar və Metodlar bölməsində təsvir olunduğu kimi aparılmışdır. İmmunopreksiya Myc etiketli Rpb1p əleyhinə bir anti-Myc antikoru (9E10 Santa Cruz Biotechnology, Inc.) istifadə etməklə həyata keçirilmişdir. İmmunopresipitasiya olunmuş DNT A panelində təsvir olunduğu kimi A, B və C regionlarını əhatə edən primer cütlərindən istifadə etməklə PCR ilə təhlil edildi. İmmunopresipitatın avtoradioqramdakı girişə nisbəti (ChIP siqnalı adlanır) ölçüldü. Maksimum ChIP siqnalı 100-ə təyin edildi və digər ChIP siqnalları 100-ə nisbətdə normallaşdırıldı (normallaşdırılmış və ya nisbi doluluq kimi təmsil olunur). Normallaşdırılmış yaşayış yeri histogram şəklində tərtib edilmişdir. (C) B. B panelində təqdim olunan ChIP məlumatları üçün avtoradioqramlar, immunopresipitasiya. (D) 3 ′ ucunda RNT polimeraz II analizi GAL10 kodlaşdırma ardıcıllığı (B bölgəsi), GAL7 əsas təşviqçi (A bölgəsi) və GAL1-GAL10 UAS (C bölgəsi) anti-HA ilə birlikdə dekstroz tərkibli böyümə mühitində spesifik olmayan bir antikor olaraq. Myc etiketli Rpb1p ifadə edən bir maya suşu YPG mühitində bir OD üçün yetişdirildi600 30°C-də 0.8 və sonra çarpaz birləşmədən 3 saat əvvəl YPD mühitinə köçürülür. (E) D panelindəki Myc etiketli Rpb1p-in ChIP siqnalının anti-HA-ya nisbəti (yəni, Hp ilə müqayisədə Rpb1p-Myc ChIP siqnalının qat artması) histoqram şəklində tərtib edilir. 1 nisbəti RNT polimeraz II ilə heç bir əlaqənin olmadığını göstərir. (F) Dekstroza tərkibli böyümə mühitində anti-HA-ya nisbətən RNT polimeraza II-nin RNT polimeraza I geni (Pol I) ilə əlaqəsinin təhlili. Myc etiketli Rpb1p-in ChIP siqnalının anti-HA-ya nisbəti histoqram şəklində tərtib edilmişdir. (G) RNA polimeraz II birləşməsinin 3 ′ ucundakı ChIP analizi GAL10 bir Myc epitop etiketi ilə və ya olmadan Rpb1p ifadə edən maya suşundakı kodlaşdırma ardıcıllığı (B bölgəsi). Maya ştammları D panelində təsvir olunduğu kimi yetişdirilmişdir. İmmunopresipitasiya anti-Myc antikorundan istifadə etməklə həyata keçirilmişdir. Şəkil 2 Təhlili GAL10 antisens transkript. (A) Təhlil üçün eksperimental strategiyanı göstərən sxematik diaqram GAL10 antisens transkript. P1 astar 5 'sonuna doğru yönəldilmişdir GAL10 antisens transkript AMV tərs transkriptaza əsaslanan tərs transkripsiya ilə 42 ° C-də uzadıldı və sonradan uzadılmış astar M və N kodlaşdırma bölgələrinə yönəldilmiş astar cütləri ilə gücləndirildi. GAL10GAL7müvafiq olaraq. (B) GAL10 dekstroz tərkibli böyümə mühitində antisens transkripsiyası. Myc etiketli Rpb1p ifadə edən bir maya suşu YPG mühitində bir OD üçün yetişdirildi600 30 ° C -də 0.8 və sonra 3 saat YPD mühitinə keçildi. Total RNA, A panelində göstərildiyi kimi təcrübə strategiyasından sonra ayrıldı və təhlil edildi GAL10 kodlaşdırma ardıcıllığı (M bölgəsi), P1 primer tərəfindən sintez edilən cDNA -dan PCR məhsulu yaradır. Əks transkriptaza cDNT sintezində −RTase zolağında istifadə edilməmişdir. (C) hədəflənmiş PCR primer cütlərindən istifadə edərək genomik DNT-nin gücləndirilməsi GAL7, GAL10GAL1 kodlaşdırma ardıcıllığı. Eyni primer cütləri A və B panellərində olduğu kimi istifadə edilmişdir. (D) B panelində təsvir olunduğu kimi dekstroz tərkibli böyümə mühitində RT-PCR analizi. (E) B panelində təsvir olunduğu kimi dekstroz tərkibli böyümə mühitində RT-PCR analizi oliqo(dT) primerindən istifadə etməklə. Myc etiketli Rpb1p ifadə edən maya ştammı YPG mühitində OD-yə qədər yetişdirildi.600 30°C-də 0,8 və sonra 3 saat ərzində YPG və ya YPD mühitinə köçürülür. Qal, qalaktoza Deks, dekstroza. (F) cDNT sintezində P1 primerindən istifadə edərək, dekstroza və qalaktoza tərkibli böyümə mühitində B panelində təsvir olunduğu kimi RT-PCR analizi. Myc etiketli Rpb1p ifadə edən maya ştammı E panelində təsvir olunduğu kimi yetişdirildi. (G) RT-PCR təhlili B panelində təsvir olunduğu kimi qalaktoza tərkibli böyümə mühitində. Şəkil 3 RNT polimeraza II assosiasiyasının 3′ ucu ilə kinetik analizi GAL10 kodlaşdırma ardıcıllığı. (A) RNT polimeraza II assosiasiyasının 3′ ucu ilə kinetik analizi GAL10 böyümə mühitinin YPG -dən YPD -yə keçməsindən sonra kodlaşdırma ardıcıllığı. Myc etiketli Rpb1p ifadə edən bir maya suşu YPG mühitində bir OD üçün yetişdirildi600 30 ° C-də 0.8 və sonra çapraz bağlamadan əvvəl müxtəlif vaxtlar üçün YPD mühitinə köçürülür. İmmunopresipitasiya Şəkil 1B əfsanəsində təsvir olunduğu kimi həyata keçirilmişdir. 0 dəqiqədə ChIP siqnalı 100 -ə, digər zaman nöqtələrində isə ChIP siqnalları 100 -ə görə normallaşdırıldı. Rpb1p -in normallaşmış (və ya nisbi) dolğunluğu histoqram şəklində tərtib edildi. (B) A panelindəki ChIP məlumatları üçün avtoradioqramlar. (C) RNA polimeraz II Assosiasiyası GAL10 A panelində təsvir olunan YPD mühitində kodlaşdırma ardıcıllığı (3 ilə 180 dəq arasında) ayrıca təqdim edilmişdir. YPD mühitində maksimum ChIP siqnalı 100-ə təyin edildi və digər ChIP siqnalları 100-ə nisbətdə normallaşdırıldı. Bir təcrübədə 60 dəqiqəlik vaxt nöqtəsi 180 dəqiqəlik vaxt nöqtəsindən bir qədər yüksək ChIP siqnalını göstərir və beləliklə, 100-ə təyin edildi. Digər təcrübələrdə 180 dəqiqəlik vaxt nöqtəsi 60 dəqiqəlik vaxt nöqtəsindən bir qədər yüksək ChIP siqnalını göstərir və 100-ə təyin edildi. Rpb1p-nin normallaşdırılmış (və ya nisbi) doluluğu histoqram şəklində tərtib edilmişdir. (D) RT-PCR analizi. Nəsil GAL10 böyümə mühitinin YPG-dən YPD-yə keçidindən sonra antisens RNT. A panelinin əfsanəsində təsvir edildiyi kimi bir maya ştammı yetişdirildi. GAL10 cDNA sintezində P2 astarından istifadə edərək antisens RNT analiz edildi GAL10 cDNA -nın PCR gücləndirilməsində əsas təşviqçi (Şəkil 4A -da təsvir edildiyi kimi). Səviyyələri ACT1 transkriptlər nəzarət kimi izlənildi. (E) D panelində göstərilən nəticələr histoqram şəklində tərtib edilmişdir. Maksimum siqnal GAL10 antisens transkripti 100 olaraq təyin olundu və səviyyələri GAL10 Digər vaxt nöqtələrindəki antisens transkriptləri 100-ə nisbətdə normallaşdırıldı. Eynilə, maksimum ACT1 transkript səviyyəsi 100 və səviyyələri təyin edildi ACT1 digər vaxt nöqtələrində transkriptlər 100-ə nisbətdə normallaşdırıldı. Şəkil 4 RNT polimeraza II üçün vacibdir GAL10 antisens transkripsiyası. (A) analiz üçün eksperimental strategiyanı göstərən sxematik diaqram GAL10 P2 astar istifadə edərək antisens transkript. P2 astar 5 'sonuna doğru yönəldilmişdir GAL10 antisens transkripti, lakin uyğun bir bölgəni əhatə edir GAL10-GAL1 42 ° C -də tərs transkripsiya ilə uzadılmış və sonradan uzadılmış astar əsas təbliğçi bölgəsinə yönəldilmiş astar cütləri ilə gücləndirilmişdir. GAL10 (region L) və kodlaşdırma ardıcıllığı bölgəsi GAL7 (N bölgəsi). (B) GAL10 dekstroz tərkibli böyümə mühitində antisens transkripsiyası. Astar cütü GAL10 əsas təşviqat bölgəsi (bölgəsi L), lakin deyil GAL7 kodlaşdırma ardıcıllığı (region N) dekstroza tərkibli böyümə mühitində P2 primeri tərəfindən sintez edilmiş cDNA-dan PCR məhsulu yaratdı. Myc etiketli Rpb1p ifadə edən maya ştammı Şəkil 2E-nin əfsanəsində təsvir olunduğu kimi yetişdirildi. (C) B panelində göstərilən cDNA-ların gücləndirilməsi üçün PCR primer cütündən istifadə etməklə ACT1 kodlaşdırma ardıcıllığı. (D) 3′ ucunda RNT polimeraza II-nin analizi GAL10 kodlaşdırma ardıcıllığı (B bölgəsi) (Şəkil 1A), GAL7 əsas təşviqçi (A bölgəsi) (Şəkil 1A) və GAL10-GAL1 UAS (bölgə C) (Şəkil 1A), dekstroz və qalaktoza ehtiva edən artım mühitlərində qeyri-spesifik bir antikor nəzarəti olaraq anti-HA ilə birlikdə. Myc etiketli Rpb1p ifadə edən maya ştammı çarpaz birləşmədən əvvəl Şəkil 2E-nin əfsanəsində təsvir edildiyi kimi yetişdirildi. İmmunopreksiyalar Şəkil 1B əfsanəsində təsvir edildiyi kimi həyata keçirildi. (E) D panelindəki B bölgəsindəki Myc-etiketli Rpb1p-in ChIP siqnalının anti-HA-ya (yəni Rpb1p-myc ChIP siqnalının HA ilə müqayisədə qat artımı) nisbəti histoqram şəklində tərtib edilir. 1 nisbəti RNT polimeraz II ilə heç bir əlaqənin olmadığını göstərir. (F) RNA polimeraz II üçün vacibdir GAL10 dekstroz tərkibli böyümə mühitində antisens transkripsiyası. Yabanı tip (WT) və TS mutant Rpb1p suşları YPD mühitində 23 ° C-də bir OD-ə qədər yetişdirilmişdir.600 0,85 və sonra məhsul yığımından 1 saat əvvəl 37°C-yə keçir. Total RNA, Rpb1p vəhşi tipli və TS mutant suşlarından hazırlanmış və sonra analiz edilmişdir. GAL10 cDNA sintezində P1 primerindən istifadə edərək antisens RNT. (G) F panelində göstərilən transkripsiya məlumatları histoqram şəklində tərtib edilmişdir. Vəhşi tipli ştammda RNT səviyyəsi 100-ə təyin edilib və mutant ştammda RNT səviyyəsi 100-ə nisbətdə normallaşdırılıb.

GAL10 kodlaşdırma ardıcıllığının 3′ sonundakı Reb1p ilə bağlanma yeri antisens transkripsiyası üçün RNT polimeraza II-nin hədəflənməsini asanlaşdırır.

Şəkil 5 Reb1p bağlama yeri, RNA polimeraz II-nin 3 ′ ucunda işə götürülməsi üçün vacibdir. GAL10 üçün dekstroz tərkibli böyümə mühitində kodlaşdırma ardıcıllığı GAL10 antisens transkripsiyası. (A) Reb1p bağlama yerini, TATA qutusunu və 3′ ucunda antisens transkripsiyasının başlanğıc yerini göstərən sxematik diaqram GAL10 kodlaşdırma ardıcıllığı. Nömrələr, translational stop kodonunun mövqeyinə görə təqdim olunur GAL10. (B) Antisens RNT polimeraz II -nin 3 ′ ucuna qəbulunun təhlili GAL10 vəhşi tip (WT) suda kodlaşdırma ardıcıllığı və Reb1p-bağlama yerində (Reb1p-BSΔ) mutant daşıyan mutasiyalar. Həm yabanı tipli, həm də mutant suşlar Şəkil 1B əfsanəsində təsvir edildiyi kimi yetişdirilmişdir. İmmunopresipitasiya RNT polimeraza II-nin ən böyük alt bölməsinin (Rpb1p) karboksi-terminal domeninə qarşı 8WG16 antikorundan (Covance, Inc.) istifadə edilərək həyata keçirilmişdir. İmmunopresipitasiya edilmiş DNT, 3′ ucuna yönəlmiş primer cütündən istifadə edərək PCR ilə təhlil edildi. GAL10 kodlaşdırma ardıcıllığı (B bölgəsi) (Şəkil 1A). Vəhşi tip suşun ChIP siqnalı 100 olaraq təyin edildi və mutant suşun ChIP siqnalı 100-ə görə normallaşdırıldı (normal və ya nisbi doluluq kimi təmsil olunur). (C) B panelində təqdim olunan ChIP məlumatları üçün avtoradioqramlar. (D) Təhlili GAL10 cDNA sintezində P1 primerindən istifadə edərək dekstroz tərkibli böyümə mühitində vəhşi tipli və Reb1p-BSΔ ştammlarında antisens transkripsiyası. Həm vəhşi tip, həm də mutant ştammlar B panelində təsvir olunduğu kimi yetişdirilmişdir. (E) D və F panellərindəki transkripsiya məlumatları histoqram şəklində tərtib edilmişdir. PCR siqnalı GAL10 antisens transkripti vəhşi tip gərginlikdə 100 və səviyyəsi təyin olundu GAL10 mutant suşda antisens transkripsiyası 100 -ə görə normallaşdırılmışdır. Eyni şəkildə ACT1 transkript səviyyəsi vəhşi tipli suşda 100 olaraq təyin olundu ACT1 mutant suşunda transkript 100 ilə əlaqədar olaraq normallaşdırıldı. (F) Analizi GAL10 vəhşi tipdə antisens transkripsiyası və Δgal4 dekstroz tərkibli böyümə mühitində suşlar. Həm yabanı tipli, həm də mutant suşlar B (G) Analizi panelində təsvir edildiyi kimi yetişdirilmişdir GAL10 maya növündə olmayan dekstroz tərkibli böyümə mühitində antisens transkripsiyası GAL1-QAL10 təşviqatçı. A olmadan maya ştammı GAL1-QAL10 təbliğatçı B panelində təsvir edildiyi kimi yetişdirildi. (H) The GAL10 3 'sonu tək bir müxbir plazmidindən transkripsiyanı idarə edə bilməz. Sxematik diaqramlar (solda) LacZ reportyor plazmidini (pRS416) göstərir. RPS5 promouter və ya GAL10 3′ sonu. Yuxarıdakı rəqəmlər RPS5 promoter (məna), transkripsiya başlanğıc sahəsinin birinci nukleotidinə görə təqdim olunur RPS5. Yuxarıdakı rəqəmlər GAL10 3 'ucu, translational stop kodonunun son nukleotidinə görə təqdim olunur GAL10. LacZ kodlaşdırma ardıcıllığındakı R bölgəsi, oligo (dT) tərəfindən yaradılan cDNA istifadə edərək gücləndirildi. Altında LacZ transkriptinin təhlili RPS5 promouter və ya GAL10 3′ sonu yerinə yetirildi (sağda) Yuxarıdakı konstruksiyalar vəhşi tipli maya hüceyrələrinə çevrildi və sonra dekstroz tərkibli mühitdə OD-yə qədər böyüdüldü.600 RNT analizi üçün yığımdan əvvəl 30°C-də 1.0. Kodlaşdırma bölgələri ACT1GAL7 oligo (dT) tərəfindən yaradılan cDNA istifadə edərək, yükləmə və DNT-çirklənməməsi üçün nəzarət olaraq gücləndirildi.

TBP RNT polimeraza II-nin 3′ ucuna yığılmasını təşviq edir GAL10 antisens transkripsiyası üçün kodlaşdırma ardıcıllığı.

Şəkil 6 TBP RNT polimeraza II-nin 3′ ucuna yığılması üçün tələb olunur. GAL10 üçün dekstroza ehtiva edən böyümə mühitində kodlaşdırma ardıcıllığı GAL10 antisens transkripsiyası. (A) Antisens RNT polimeraz II -nin 3 ′ ucuna cəlb edilməsinin təhlili GAL10 TBP-nin vəhşi tipli və mutant suşlarında kodlaşdırma ardıcıllığı (SPT15-WT və spt15-ts) tərkibində dekstroza olan böyümə mühitində. Həm vəhşi tip, həm də mutant suşlar YPD mühitində 23°C-də OD-yə qədər böyüdülmüşdür.600 0.85 və sonra 37 ° C-ə 1 saat boyunca bağlamadan əvvəl köçürülür. İmmunopreksiya Şəkil 5B əfsanəsində göstərildiyi kimi həyata keçirildi. (B) A panelində göstərilən ChIP məlumatları üçün avtoradioqramlar. (C) Təhlili GAL10 vəhşi tipdə antisens transkripsiyası və spt15cDNT sintezində P1 primerindən istifadə edərək, dekstroza tərkibli böyümə mühitində -ts mutant suşları. Həm yabanı tipli, həm də mutant suşlar A panelində təsvir edildiyi kimi yetişdirilmişdir. (D) C panelindəki transkripsiya məlumatları histoqram şəklində tərtib edilmişdir. PCR siqnalı GAL10 vəhşi tipli suda antisens transkripti 100 və səviyyəsi təyin edildi GAL10 mutant suşda antisens transkripsiyası 100 -ə görə normallaşdırılmışdır. Eyni şəkildə ACT1 transkript səviyyəsi vəhşi tipli suşda 100 olaraq təyin olundu ACT1 mutant suşunda transkript 100 ilə əlaqədar olaraq normallaşdırıldı. (E) Analizi GAL10 vəhşi tipdə antisens transkripsiyası və rpt4cDNA sintezində P1 primeri istifadə edərək dekstroz tərkibli böyümə mühitində -ts mutant suşları. Maya ştammları A panelində təsvir edildiyi kimi yetişdirildi. (F) Təhlili GAL10 cDNT sintezində P1 primerindən istifadə edərək, dekstroza tərkibli böyümə mühitində MG132-nin mövcudluğu və olmaması ilə antisens transkripsiyası. Null mutasiyasını daşıyan maya hüceyrələri PDR5 YPD mühitində 30°C-də OD vəziyyətinə qədər yetişdirilmişdir600 0.7 və sonra yığımdan 2 saat əvvəl MG132 (75 μM) ilə müalicə olunur. (G) GAL10 E və F panellərində göstərilən antisens transkripsiya məlumatları histogram şəklində tərtib edilmişdir. PCR siqnalı GAL10 antisens transkripti vəhşi tip gərginlikdə 100 və səviyyəsi təyin olundu GAL10 mutant suşda antisens transkripsiyası 100 -ə görə normallaşdırılmışdır. Eyni şəkildə ACT1 transkript səviyyəsi vəhşi tipli suşlarda 100 olaraq təyin edildi ACT1 mutant ştammdakı transkript 100-ə nisbətdə normallaşdırıldı. Eynilə, MG132-nin olmaması ilə bağlı MG132-nin iştirakı ilə PCR siqnalları normallaşdırıldı.

TAF-lar RNT polimeraza II-nin 3′ ucuna hədəflənməsini asanlaşdırır GAL10 antisens transkripsiyası üçün kodlaşdırma ardıcıllığı.

Şəkil 7 Antisens RNT polimeraza II-nin 3′ ucuna cəlb edilməsinin təhlili GAL10 antisens transkripsiyası üçün dekstroz tərkibli böyümə mühitində TAF11p və TAF13p-nin vəhşi tipli və mutant suşlarında kodlaşdırma ardıcıllığı. (A) TAF13p RNT polimeraza II-nin 3′ ucuna daxil olması üçün tələb olunur. GAL10 dekstroz tərkibli böyümə mühitində kodlaşdırma ardıcıllığı. Həm vəhşi tip, həm də mutant ştammlar Şəkil 6A-nın əfsanəsində təsvir olunduğu kimi böyüdülmüş, çarpaz bağlanmış və immunopresipitasiya edilmişdir. (B) A panelində göstərilən ChIP məlumatları üçün avtoradioqramlar (C) TAF11p, RNA polimeraz II -nin 3 ′ ucuna cəlb edilməsi üçün lazımdır. GAL10 dekstroz tərkibli böyümə mühitində kodlaşdırma ardıcıllığı. Həm yabanı tipli, həm də mutant suşlar, Şəkil 6A əfsanəsində təsvir edildiyi kimi böyüdülmüş, çapraz bağlanmış və immunopresipitasiya edilmişdir. (D) C panelində göstərilən ChIP məlumatları üçün avtoradioqramlar. (E) RT-PCR analizi GAL10 içərisində antisens transkripsiyası taf11-ts və taf13Şəkil 2B əfsanəsində təsvir edildiyi kimi dekstroz tərkibli böyümə mühitində -ts mutant suşları və onların yabanı tipli ekvivalentləri. Maya hüceyrələri Şəkil 6A əfsanəsində təsvir olunduğu kimi yetişdirildi. (F) E panelindəki məlumatlar histoqram şəklində tərtib edilmişdir. PCR siqnalı GAL10 antisens transkripti vəhşi tip gərginlikdə 100 və səviyyəsi təyin olundu GAL10 mutant suşda antisens transkripsiyası 100 -ə görə normallaşdırılmışdır. Eyni şəkildə ADH1 transkript səviyyəsi vəhşi tipli suşda 100 olaraq təyin olundu ADH1 mutant ştammdakı transkript 100-ə nisbətdə normallaşdırıldı.

TFIIB və Mediator RNT polimeraza II-nin 3′ ucuna hədəflənməsini asanlaşdırır. GAL10 antisens transkripsiyası üçün kodlaşdırma ardıcıllığı.

Şəkil 8 TFIIB və Vasitəçi, antisens RNT polimeraz II -nin 3 ′ ucuna cəlb edilməsi üçün lazımdır. GAL10 kodlaşdırma ardıcıllığı. (A) RNT polimeraza II-nin 3′ ucuna yığılmasının təhlili GAL10 TFIIB-nin vəhşi tipli və mutant suşlarında kodlaşdırma ardıcıllığı (SUA7-WT və sua7-ts) tərkibində dekstroza olan böyümə mühitində. Həm yabanı tipli, həm də mutant suşlar, Şəkil 6A əfsanəsində təsvir edildiyi kimi böyüdülmüş, çapraz bağlanmış və immunopresipitasiya edilmişdir. (B) A panelində göstərilən ChIP məlumatları üçün avtoradioqramlar. (C) RT-PCR analizi GAL10 antisens RNT SUA7 2B-nin əfsanəsində təsvir olunduğu kimi dekstroza tərkibli böyümə mühitində vəhşi tipli və TS mutant ştammları. Maya hüceyrələri Şəkil 6A əfsanəsində təsvir edildiyi kimi yetişdirilmişdir. (D) C panelində göstərilən transkripsiya məlumatları histoqram şəklində tərtib edilmişdir. PCR siqnalı GAL10 antisens transkripti vəhşi tip gərginlikdə 100 və səviyyəsi təyin olundu GAL10 mutant suşda antisens transkripsiyası 100 -ə görə normallaşdırılmışdır. Eyni şəkildə ACT1 transkript səviyyəsi vəhşi tipli suşda 100 olaraq təyin olundu ACT1 mutant suşda transkript 100 -ə görə normallaşdırıldı. GAL10 Mediatorun vəhşi və mutant suşlarında kodlaşdırma ardıcıllığı (SRB4-WT və srb4-ts) tərkibində dekstroza olan böyümə mühitində. Həm yabanı tipli, həm də mutant suşlar, Şəkil 6A əfsanəsində təsvir edildiyi kimi böyüdülmüş, çapraz bağlanmış və immunopresipitasiya edilmişdir. (F) E panelində göstərilən ChIP məlumatları üçün avtoradioqramlar.

AP Mühazirə Kılavuzu 17 – Gendən Proteinə

2. Metabolik yollar boyunca meydana gələn bəzi genetik xəstəlikləri müəyyənləşdirin.

3. Bidl və Tatumun fermentlərlə bağlı fərziyyəsi nə idi?

4. Bu fərziyyə necə dəyişdirilib?

5. Transkripsiya zamanı nə baş verir?

6. Tərcümə zamanı nə baş verir?

7. Zülal prosesi prokaryotlarda və eukaryotlarda necə fərqlənir?

8. Marshall Nirenberg və Heinrich Matthaei "genetik kodu necə sındırdılar?"

9. Genetik kod nədir və niyə universal olduğu deyilir?

10. Genetik kod haqqında bir neçə xüsusiyyəti sadalayın.

11. Oxu çərçivələri dəyişdirildikdə nə baş verə biləcəyinə misal göstərin?

12. Transkripsiyanın üç mərhələsinin əsas məqamlarını sadalayın.

a. Başlanğıc ________________________________________________________________

b. Uzanma ______________________________________________________________

c. Xitam _____________________________________________________________

13. Transkript RNT nüvədən çıxmazdan əvvəl nə olur?

14. 5 'qapaqlı və poli A quyruğun üstünlüyü nədir?

15. Ekzonlar və intronları ayırd edin.

16. RNT -nin birləşmə mexanizmini təsvir edin.

17. Alternativ RNT emalı hüceyrələr üçün nə edir?

18. Tərcümə prosesinin oyunçularının rollarını müəyyənləşdirin.

a. Transfer RNT _____________________________________________________

b. Aminoasil-tRNT sintetaza _________________________________________________

c. Ribozomlar _____________________________________________________________

19. Tərcümənin mərhələlərini müəyyən edin və qısaca təsvir edin. Başlama uzanmasına son qoyulması

20. Polyribosomların üstünlüyü nədir?

21. Polipeptidin əlavə emal üçün ER-yə necə daxil olduğuna dair nümunə göstərin.

22. Prokaryotlar və eukariotlar arasında zülal sintezi nə ilə fərqlənir?

23. Nöqtə mutasiyalarını təyin edin. ______________________________________________________

24. Mutasyonları təyin edin:

a. Missiya ______________________________________________________________

b. Cəfəngiyat ________________________________________________________________

c. Daxil etmə və ya silmək ______________________________________________________

25. Gendən protein məhsuluna kimyəvi məlumat axını izləmək üçün diaqramdan istifadə edin.


Aktivləşdirilmiş p53 ilə β-Kateninin aşağı tənzimlənməsi

Şəkil 1. DOX-in yaratdığı p53 ifadəsinin β-katenin təşkilinə və səviyyəsinə təsiri. MEF hüceyrələri lövhələr üzərində örtülmüş, 24 saat ərzində ml başına 5 μg DOX ilə işlənmiş, p53 üçün anti-siçan p53 poliklonal antikoru (A, C, E və G) və β-katenin ( β-pişik) bir monoklonal anti-β-katenin antikoru (B, D, F və H) istifadə edir. Bar, 10 μm. Şəkil 2. Müxtəlif hüceyrə tiplərinin Triton X-100-də həll olunan və həll olunmayan fraksiyalarında p53 yüksəlməsinin β-katenin səviyyələrinə təsiri. Hüceyrələr göstərilən müddət ərzində ml (A və B) üçün 5 μg DOX və ya ml başına 5 μg sisplatin (C və D) ilə müalicə edildi. Zülallar Triton X-100-də həll olunan (zolaqlar) və həll olunmayan (i zolaqları) fraksiyalarına bölündü, natrium dodesil sulfat-poliakrilamid gel elektroforezi ilə həll edildi və Şəkil 1-dəki əfsanədə göstərilən antikorlardan istifadə edərək Western blot analizinə məruz qaldı. və antivinkulin (vin) antikoru ilə. MEF p53 +/ + (A və C) və MEF p53 -/ - (B və D) hüceyrələrinin nümayəndəsi jellərindən olan bantların intensivliyi ölçülmüş və (A ', C', B 'və D') ). WI38 hüceyrələrindən (E və E ') çıxarışlar monoklonal anti-β-katenin antikoru (β-pişik), vinculin (vin) və anti-insan p53 antikorlarının DO1 və 1801 qarışığı ilə ləkələnmiş və təsvir edildiyi kimi təhlil edilmişdir. MEF hüceyrələri. a.u., ixtiyari vahidlər. Şəkil 3. P53 və β-katenin həddindən artıq ifadəsinin bu zülalların səviyyələrinə və β-katenin transkripsiya fəaliyyətinə qarşılıqlı təsiri. (A) p53 və ya nəzarət boş vektoru 293 hüceyrəyə köçürüldü. 20 saatdan sonra hüceyrələr Triton X-100-də həll olunan (zolaqlar) və-həll olunmayan (şeritli i) fraksiyalarına bölündü və Western blot analizinə məruz qaldı. Β-catenin (β-cat), p53 və vinculin (vin) mövqeləri qeyd olunur. (B) p53 və β-kateninin iştirakı ilə müxtəlif promotorların transkripsiya nəzarəti altında lusiferazanı ifadə edən reportyor plazmidləri ilə transaktivasiya analizləri. Barlar 1 və 2, siklin G (CycG) təbliğatçı çubuqlar 3 və 4, sitomegalovirus təbliğatçı çubuqlar 5-8, FOPFLASH çubuqlar 9-12, TOPFLASH. Hüceyrələr transfeksiyadan 20 saat sonra toplandı və lusiferaza və β-qalaktosidaza analizlərinə məruz qaldı. Standart səhv göstərilir. (C) Transfekte edilmiş p53-ün anti-HA antikoru ilə ləkələnmiş kotransfekte olmuş HA-β-katenin və ya HA-plakoglobin (PG) səviyyələrinə təsiri. Β-katenin, plakoglobin və p53 mövqeləri göstərilir. (D) H1299 hüceyrələri (p53 çatışmazlığı olan) artan miqdarda HA-β-katenin (0 ilə 4 μg) və sabit miqdarda p53 (100 ng) (1-dən 3-ə qədər zolaqlar) və ya sabit miqdarda HA-β-katenin (4 μg) və artan miqdarda p53 (0-dan 600 ng) (4-cü zolaqlar). HA-β-catenin (β-cat) və p53 səviyyələri Western blot analizi ilə təyin edilmişdir. Endogen vinculin yükləmə nəzarəti olaraq xidmət etdi.

Β-katenin və p53 ifadəsi arasındakı qarşılıqlı əlaqə.

P53 mutantları β-katenin səviyyəsini aşağı sala bilmirlər

Şəkil 4. p53 mutantları β-katenin (β-cat) səviyyələrini və transaktivasiya qabiliyyətini azalda bilmir. (A) p53Δ13-52 mutantının sxematik təsviri. TAD, transaktivasiya sahəsi. (B) 293 hüceyrədə transaktivasiya, TOPFLASH müxbir plazmidindən istifadə edərək ya tək (bar 1), ya da HA-β-katenin (2-dən 4-ə qədər çubuqlar) ilə wt siçan p53 (bar 3) və ya mutant Δ13-52 varlığında transfekte edilir. siçan p53 (bar 4). Hüceyrələr transfeksiyadan 20 saat sonra yığılır və lusiferaza aktivliyi analizinə məruz qalır. Standart səhv göstərilir. (C) B panelindəki təcrübədən hüceyrə lizatlarında β-katenin, p53 və p53Δ13-52 üçün Western blot analizi. (D) İnsan wt p53 və ya insan p53R175H mutantı HA-β-katenin ilə 293 hüceyrəyə kotransfeksiya edildi və Western blot analizinə məruz qalıb. (E) p53, Mdm2 çatışmazlığı olan MEF-də β-katenin səviyyələrini azalda bilər. p53 −/− Mdm2 −/− ikiqat mutant MEF, 300 ng p53 plazmidinin mövcudluğu və ya olmaması ilə 5 μg β-katenin plazmidi ilə transfeksiya edilmişdir. Transfeksiya edilmiş (HA etiketli) β-katenin səviyyəsi Western blot analizi ilə müəyyən edilmişdir. β-katenin və p53 mövqeləri göstərilmişdir. C, D və E panellərindəki ulduzlar anti-HA antikoru ilə əldə edilən qeyri-spesifik zolağını təmsil edir.

GSK3β və proteazom sisteminin p53-vasitəçiliyində β-katenin aşağı tənzimlənməsində iştirakı.

Şəkil 5. GSK3β aktivliyinin bloklanması, poliubiquitinasiya və proteazomal parçalanma p53-ün β-katenin (β-pişik) üzərində təsirini maneə törədir. (A) wt HA – β-catenin, p53 (3 və 4 zolaqlar) və ya p53 olmayan (1 və 2 zolaqlar) olan 293 hüceyrəyə köçürüldü və mədəniyyətlərin yarısı 30 mM LiCl (şerit 2 və 4) ilə bir gecədə müalicə edildi. hüceyrələrin yığılmasından və HA-β-katenin və p53 səviyyələrinin Western blot analizi ilə təyin edilməsindən əvvəl. (B) wt β-katenin (1-dən 4-ə qədər zolaqlar) və ya HA-S33Y β-katenin mutantı (5-dən 8-ə qədər zolaqlar) p53 ilə 293 hüceyrəyə kotransfeksiya edilmişdir. 16 saatdan sonra göstərilən nümunələrə (3, 4, 7 və 8 zolaqlar) MG132 (25 μM) əlavə edildi. Hüceyrələr 4 saat sonra toplandı və Western blot analizinə məruz qaldı. Üst paneldə β-katenin (ağırlıq və ya S33Y mutantı) səviyyələri göstərilir. Aşağı paneldə köçürülmüş p53 göstərilir. (C) VSV etiketli β-katenin (1 μg) tək başına köçürüldü (1-ci zolaq) və ya p53 (1 μg) (şerit 2) və artan konsentrasiyalarla (2 μg [şerit 3] və 4 μg [şerit 4]) əkildi dominant-mənfi HA etiketli ΔF-β-TrCP. Transfekte edilmiş wt β-katenin anti-VSV antikoru ilə, ΔF-β-TrCP ifadəsi anti-HA etiketli antikorla izlənildi. Ulduz işarəsi anti-HA antikoru ilə əldə edilən qeyri-spesifik bandı göstərir.

P53 kolon xərçəngi hüceyrə xəttlərində mutant β-katenin deyil, wt-ni repressiya edə bilər.

Şəkil 6. wt p53 SW480 CRC hüceyrələrində β-katenini aşağı tənzimləyir. (A və B) SW480 hüceyrələri HA-p53 (4 μg) ilə transfekte edildi və transfeksiyadan 20 saat sonra HA (A) və β-katenin (β-pişik) (B) üçün immunostakasiya edildi. Oklar p53 ilə transfeksiya edilmiş hüceyrələrə işarə edir. (C) Nəzarətdə, transfeksiya edilməmiş hüceyrələrdə və p53 ilə transfeksiya edilmiş hüceyrələrdə nüvə β-kateninin kompüterləşdirilmiş kəmiyyəti. (D) p53 və ya TOPFLASH və ya FOPFLASH reportyor plazmidi ilə kotransfeksiya edilmiş SW480 hüceyrələrində transaktivasiya. Hüceyrələr transfeksiyadan 20 saat sonra yığılır və transfekte edilmiş HA-p53 üçün lusiferaza analizinə və Western blot analizinə məruz qalır. Western blotdakı HA-p53 mövqeyi göstərilir. Çubuq, 10 μm. Şəkil 7. p53, HCT116 CRC hüceyrələrinin mutant β-katenin ΔS45-ə təsir edə bilmir. (A-D) HCT116 hüceyrələri hər ml-də 5 μg DOX varlığında (A və B) və ya olmadıqda (C və D) 24 saat ərzində örtüklər üzərində becərildi. Fiksasiya edildikdən sonra, hüceyrələr DO1 və 1801 antikorlarının (A və C) qarışığı ilə p53 və poliklonal anti-β-katenin antikoru istifadə edərək β-katenin (β-pişik) (B və D) üçün ikiqat immunostain edildi. Bar, 10 μm. (E) HCT116 hüceyrələri göstərilən müddət ərzində ml başına 5 μg DOX ilə işlənmiş və Triton X-100-də (şeritlərdə) və-həll olunmayan (şeritli i) fraksiyalara bölünmüşdür. Lizatlar Western blot analizinə məruz qaldılar. Β-catenin, p53 və vinculin (vin) (nəzarət olaraq) mövqeləri göstərilmişdir. (F) Panel E. au, ixtiyari vahidlərdə göstərilən bantların intensivliyinin kəmiyyət təhlili. Şəkil 8. p53, HCT116 hüceyrələrinin ΔS45 β-katenin və transfekte edilmiş S33Y ilə transaktivasiyanı maneə törətmir, lakin bu hüceyrələrdə wt β-katenin aktivliyini maneə törədir. (A) HCT116 hüceyrələri p53 (şerit 2, 4, 6, 8, 10 və 12) ilə birlikdə FOPFLASH (1-dən 5-ə qədər zolaqlar) və ya TOPFLASH (7-dən 12-ci zolaqlar), HA-β-katenin (şeritler) ilə köçürüldü. 3, 4, 9 və 10) və ya p53 və HA-S33Y β-katenin (5, 6, 11 və 12 zolaqları). Luciferase fəaliyyəti transfeksiyadan 20 saat sonra müəyyən edildi və β-katenin (β-cat) (ağırlıq) və mutant (S33Y) və p53 ifadəsi üçün hüceyrə lizatlarının Western blot analizləri aparıldı. (B) HCT116 hüceyrələri wt və S33Y β-katenin ilə transfekte edildi və ya Şəkil 7 (barlar 7-12) üçün təsvir edildiyi kimi DOX (p53 səviyyələrini yüksəltmək üçün) ilə müalicə edildi və ya müalicə edilmədən (barlar 1-dən 6-ya qədər) müalicə edildi. FOPFLASH və TOPFLASH reportyor plazmidləri tərəfindən idarə olunan transaktivasiya müəyyən edilmişdir. Standart səhv göstərilir.

Ökaryotlar transkripsiyanı necə dayandırır? (Campbell Biologiyasına dair aydınlıq) - Biologiya

33 qeyd kartı = 9 səhifə (hər səhifədə 4 kart)

Campbell Biologiyası (Bio 181) 16-17

GTP tərcüməsinin funksiyası nədir?

GTP başlanğıc amillərindən istifadə edərək başlanğıc kompleksinə enerji verir.

DNT replikasiyası zamanı geridə qalan zəncirinin uzanmasında DNT liqazının rolu nədir?

Ozaki parçalarını birləşdirir.

Timin dimerini nukleotidlərin kəsilməsi ilə bərpa etmək üçün lazım olan fermentlər hansı ardıcıllıqla fəaliyyət göstərir?

Endonukleaz, DNT polimeraz I, DNT ligaz.

Aşağıdakılardan hansı prokaryotik eukaryotik gen ifadəsində meydana gəlmir, amma ni eukaryotik gen ifadələrində olur?

a. mRNA, tRNA və rRNA transkripsiya olunur
b. RNT polimeraza molekulu uzatmaq üçün bir primer tələb edir
c. Bir mRNA-nın 3 'ucuna bir poly-A quyruğu və 5' ucuna bir qapaq əlavə olunur.
d. RNT polimearse promotora bağlanır
e. Transkripsiya bir az da olsa başlayan kimi başlaya bilər

MRNA -nın bir polipeptidin əsas quruluşuna çevrilməsinin dəqiqliyi, spesifikliyindən asılıdır.

Antikodonun kodona bağlanması və amin turşularının tRNT-lərə bağlanması.

DNT -ni meydana gətirən ipliklərlə əlaqədar & quotantiparallel & quot ifadəsi nə deməkdir?

Bir ipin 5 ' - 3' istiqaməti digər ipin 5 ' - 3' istiqamətinə ziddir.

Xromosomun müəyyən bir sahəsində, zəncirin replikasiya çəngəlini meydana gətirmək üçün açıldığı yerdə aşağıda nukleotidlərin ardıcıllığı mövcuddur: 3' C C T A G G C T G C A A T C C 5' Şablonun altından xətt çəkilmiş T (T) nöqtəsindən başlayaraq RNT primeri əmələ gəlir. Aşağıdakılardan hansı primer ardıcıllığı təmsil edir?
A) 5' G C C T A G G 3'

Kristallaşmış DNT-nin rentgen difraksiyasından birbaşa nə müəyyən edilə bilər?

spiralın diametri

Niyə DNT -də bir nöqtə mutasiyası zülalın aktivlik səviyyəsində fərq yarada bilər?

Aktiv sahədə bir amin turşusu əvəz edə bilər

Yeni bir DNT zəncirinin uzanması yalnız 5'-dən 3'-ə qədər uzanır, çünki.

DNT polimeraza yalnız sərbəst 3' ucuna nukleotidlər əlavə edə bilər.

Topoizomerazın funksiyası nədir?

Bir topoizomeraz DNT-nin dolanması və açılmasını tənzimləyən bir fermentdir. Funksiya DNT -nin topologiyasını tənzimləməsidir.

Aşağıdakılardan hansı poly-A siqnal ardıcıllığının funksiyasıdır?

A. Eukaryotik transkriptlərdə enzimatik parçalanma siqnalı verən ardıcıllığı kodlayır.

B. mRNA -nın 3 'ucunun ribosoma bağlanmasına imkan verir.
C. RNT polimerazının hidrolizini kodlayan bir ardıcıllıqdır.
D. mRNT-nin 3' ucuna poli-A quyruğu əlavə edir.
E. mRNT-nin 3' ucuna 7-metilquanozin qapağı əlavə edir.

Okazaki fraqmenti aşağıdakı quruluşlardan hansına malikdir?
A) primaz, polimeraza, ligaza
B) 3 'RNT nukleotidləri, DNT nukleotidləri 5'
C) 5 'RNT nukleotidləri, DNT nukleotidləri 3'
D) DNT polimeraz I, DNT polimeraza III
E) 5 'DNA 3'

DNT polimeraza III funksiyası nədir?

Artan bir DNT zəncirinin sonuna nukleotidlər əlavə etmək.

Bir amin turşusunu təyin edən 61 mRNT kodonu var, ancaq yalnız 45 tRNA. Bu ən yaxşı faktla izah olunur

A) bəzi tRNA -larda dörd və ya daha çox fərqli kodonu tanıyan antikodonlar var.

B) bir kodonun üçüncü bazası ilə tRNA arasındakı əsas cütləşmə qaydaları çevikdir.
C) bir çox kodon heç vaxt istifadə edilmir, buna görə də onları tanıyan tRNA -lar yayılır.

D) bütün 61 tRNT üçün DNT kodlar, lakin bəziləri daha sonra məhv edilir.

E) rəqabət istisnası bəzi tRNA -ları nukleazalar tərəfindən məhv edilməsinə məcbur edir.

Bir hüceyrə histon zülalları istehsal edə bilməsəydi, aşağıdakılardan hansı ehtimal olunan bir təsir olardı?
A) Santrifüj zamanı istehsal olunan & quot; peyk & quot; DNT miqdarında artım olacaq.
B) Hüceyrənin DNT -sini nüvəsinə yığmaq mümkün deyildi.
C) Profil zamanı mil lifləri əmələ gəlməyəcək.
D) Digər genlərin gücləndirilməsi histon çatışmazlığını kompensasiya edərdi.
E) Hüceyrədə azalmış zülalın kompensasiyası üçün psevdogenlər transkripsiya ediləcəkdi.

Hansı ferment DNT zolağının 5 'və 3 -cü istiqamətdə uzanmasını kataliz edir?

ring splicing, spliceosomun hansı molekulyar komponenti eksizyonu kataliz edir?

Telomerazı olmayan eukaryotik hüceyrədən hansını gözləyirsiniz?
A) xərçəngə tutulma ehtimalı yüksəkdir
B) Okazaki fraqmentlərinin istehsalı
C) timin dimerlərini bərpa edə bilməməsi
D) xromosom uzunluğunun azalması
E) günəş işığına yüksək həssaslıq

Bakteriyalardakı transformasiyanı necə izah edirik?

Hüceyrələrin faj DNT molekulu ilə infeksiyası.

Çərçivə dəyişikliyi mutasiyasının nəticəsi ola bilər
A) yalnız əsas daxiletmə.
B) yalnız əsas silinmə.
C) yalnız əsas əvəzetmə.
D) ardıcıl üç əsasın silinməsi.
E) bazanın ya daxil edilməsi, ya da silinməsi

Elm sərgisi layihəsi üçün iki tələbə dəyişiklik edərək Hershey və Chase təcrübəsini təkrar etməyə qərar verdi. Fosfat deyil, DNT -nin azotunu etiketləməyə qərar verdilər. Onlar hesab edirdilər ki, hər nukleotiddə yalnız bir fosfat və iki-beş azot var. Beləliklə, azotların etiketlənməsi fosfatların etiketlənməsindən daha güclü bir siqnal təmin edərdi. Niyə bu təcrübə işləməyəcək?

Amin turşuları (və beləliklə, zülallar) da azot atomlarına malikdir, buna görə də radioaktivlik DNT və zülallar arasında fərq qoymur.

Aparıcı və geridə qalan tellər bununla fərqlənir

aparıcı zəncir replikasiya çəngəlinin hərəkəti ilə eyni istiqamətdə, geridə qalan tel isə əks istiqamətdə sintez olunur.

Bir orqanizmdən alınan DNT nümunəsindəki nukleotidlərin 42% -ni sitozin təşkil edir. Bu nümunədəki nukleotidlərin təxminən neçə faizi timin olacaq?

Aşağıdakı material dəstlərindən hansı həm eukariotlar, həm də prokaryotlar tərəfindən replikasiya üçün tələb olunur?
A) cüt telli DNT, 4 növ dNTP, primer, mənşə
B) topoizomerazlar, telomerazalar, polimerazalar
C) G-C ilə zəngin bölgələr, polimerazalar, xromosom nikləri
D) nukleosomların boşaldılması, 4 dNTP, 4 rNTP
E) liqaza, primerlər, nukleazlar

Təcrübəli vəziyyətdə, tələbə tədqiqatçı 5' qapağı və poli(A) quyruğunu çıxardıqdan sonra eukaryotik hüceyrəyə mRNT molekulu daxil edir. Aşağıdakılardan hansını tapacağını gözləyərdiniz?
A) mRNT çevrilmək üçün nüvədən çıxa bilmədi.
B) Hüceyrə quyruğun olmamasını tanıyır və mRNA -nı poliadenilatlayır.
C) Molekula nüvədəki məhdudlaşdırıcı fermentlər tərəfindən həzm olunur.
D) Molekul artıq 5 'ucunda qorunmadığı üçün ekzonukleazalar tərəfindən həzm olunur.
E) Molekula ribosoma bağlanır və tərcümə olunur, lakin daha yavaş.

Bir buraxma faktorunun (RF) funksiyası nədir?

Buraxılış faktoru mRNT ardıcıllığında son kodon və ya dayandırma kodonunu tanımaqla tərcümənin dayandırılmasına imkan verən zülaldır.

Azotlu əsas adenin hansı qrupun bütün üzvlərində olur?
A) zülallar, trigliseridlər və testosteron
B) zülallar, ATP və DNT
C) ATP, RNT və DNT
D) alfa qlükoza, ATP və DNT
E) zülallar, karbohidratlar və ATP