Məlumat

Okazaki fraqmenti təcrübəsi nə vaxtsa təkrarlanıbmı?

Okazaki fraqmenti təcrübəsi nə vaxtsa təkrarlanıbmı?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Prof, Okazaki fraqmentlərinin varlığını "sübut edən" təcrübənin heç vaxt təkrarlanmadığını söylədi.

Bu doğrudur? Google Scholar-a baxmağa çalışdım və bu cür fraqmentlərin mövcudluğundan bəhs edən heç bir təcrübə tapa bilmirəm. Wikipedia, həmçinin Okazaki fraqmentlərini "tapan" digər tədqiqatçıların siyahısını göstərmir.


Polioma DNT sintezində Okazaki fraqmentlərinin əmələ gəlməsi urasilin yanlış korporasiyası nəticəsində yaranmışdır - Brynoff, et. hüceyrə; Cild 13, Buraxılış 3, p573-580, 1978-ci ilin mart ayı, çoxlarından biridir, ancaq professorunuzu təkzib etmək üçün sizə yalnız bir ehtiyac var.

Modeli təsdiqləmək üçün həmişə eyni analizləri təkrarlamaq lazım deyil. Təkrarlama eyni nəticə çıxarmaq üçün eyni eksperimental nəticələrin təkrar istehsalı deməkdir. Nəticələriniz təkbaşına təkrar edə bildiyiniz təcrübələrin nəticələri olduğu müddətcə başqa bir şəxs sizin işinizi tam olaraq təkrarlamamalıdır. Elmdə Replikasiya Standartları


DNT Replikasiyasının Tarixi Biologiya İnşası

Erkən elm adamları zülalın hüceyrənin irsi materialı olduğunu düşünürdülər, çünki o, DNT-dən daha mürəkkəbdir. Əsasən zülallar uzun polipeptid zəncirlərində 20 müxtəlif amin turşusundan ibarət idi, buna görə də elm adamları onları ən mürəkkəb struktur kimi qəbul edir və onları irsi material hesab edirlər. Bundan sonra Fred Griffith (1928) virulent S və qeyri-virulent R ştammı ilə işləmişdir. O, pnevmoniyaya səbəb olan bakteriya olan Streptococcus pneumonia-nı öyrənib. Bakteriyanın hamar xarici nüvəsi S ştammı, kobud xarici nüvəsi isə R ştammı kimi tanınır. Qriffit hər iki ştamını siçanlara yeritdi və aşkar etdi ki, yalnız S bakteriyası ölümcüldür. Sonra o, canlı ştam R bakteriyasını və istiliklə öldürülmüş S bakteriya ştamını yeritdi, lakin siçanlar öldü və o, bir səhv tapdı ki, canlı S ştamının böcəkləri birdən ortaya çıxdı. Sonra o, yalnız qızdırılan öldürülmüş S bakteriyasını vurdu və siçanlar ölmədi. O, belə nəticəyə gəldi ki, ölü bakteriya S bakteriyasından bir şey və R bakteriya ştamını S ştamına çevirdi. O, bunu "transformasiya prinsipi" adlandırdı. Beləliklə, bakteriyalar transformasiya kimi tanınan bir proses vasitəsilə genetik materialı ötürməyə qadirdir.

Bundan sonra 1943-cü ildə Oswald T. Avery öldürülmüş S ştamını sınaq borusuna qoydu. O, zülalları məhv edən fermentləri əlavə etdikdə, S bakteriya ştammı hələ də R bakteriyasını çevirə bildi, lakin DNT-ni məhv edən fermentləri əlavə etdikdə R bakteriyası transformasiya oluna bilmədi. Beləliklə, o, DNT-nin transformasiya agenti olduğu qənaətinə gəldi.

Bundan sonra 1950-ci ildə Avstriyalı biokimyaçı Edwin Chargaff DNT molekulunun kimyəvi tərkibini tədqiq etdi və onun tərkibində deoksiriboza adlı şəkər növü, üstəlik bir fosfat qrupu və adenin, timin, guanin və sitozin adlı dörd fərqli molekul və ya əsas olduğunu aşkar etdi.

Bədəndə və ya somatik hüceyrədə

DNT deoksiribonuklein turşusu deməkdir. İnsanlarda və demək olar ki, bütün digər orqanizmlərdə irsi materialdır. Bir insanın bədənindəki demək olar ki, hər hüceyrə eyni DNT-yə malikdir. Əksər DNT nüvə DNT kimi tanınan hüceyrənin nüvəsində yerləşir, lakin az miqdarda DNT də mitoxondrial DNT və ya mtDNA kimi tanınan mitoxondrilərdə tapıla bilər.

DNT-də saxlanılan bütün məlumatlar dörd kimyəvi əsasdan ibarət kod şəklində saxlanılır

İnsan DNT-si təxminən 3 milyard əsasdan ibarətdir və bu əsasların təxminən 99 faizi bütün insanlarda eynidir. Bu əsasların sırası və ya ardıcıllığı orqanizmin qurulması və saxlanması üçün mövcud olan məlumatları müəyyənləşdirir.

Bu Dörd DNT kimyəvi bazası bir-biri ilə xüsusi bir şəkildə cütləşir

T ilə cüt olmalıdır (aralarında ikiqat bağ yaradır)

G C ilə cütləşməlidir (aralarında üçlü bağ yaradır)

Hər bir cüt baza cütləri adlanan bir vahid təşkil edir. Əsasən DNT nukleotidlər adlanan alt hissələrdən ibarətdir. Hər bir baza həmçinin bir şəkər molekuluna və bir fosfat molekuluna bağlıdır. Bu şəkər molekulu, fosfat molekulu və birləşmiş əsas cütü nukleotid adlanır. Beləliklə, bir nukleotid aşağıdakı maddələrdən ibarətdir:

Bu nukleotidlər iki uzun zəncir şəklində düzülür və ikiqat sarmal adlanan spiral əmələ gətirir. Qoşa spiralın quruluşu nərdivana bənzəyir, baza cütləri nərdivanın pilləkənlərini, şəkər və fosfat molekulları isə nərdivanın şaquli yan hissələrini təşkil edir.


A. Replikasiya və Replikasiya Çəngəllərinin vizuallaşdırılması

Bakterial konjugasiya fenomenini xatırlayın, bakterial xromosomların dairəvi olduğunu nümayiş etdirməyə imkan verdi. 1963-cü ildə John Cairns bakterial DNT-nin birbaşa vizuallaşdırılması ilə bu faktı təsdiqlədi. Mədəni idi E. coli bütün hüceyrə DNT-lərini radioaktiv etmək üçün 3Hthymidine (3H-T) üzərində uzun müddətdir. Daha sonra DNT-nin zədələnməsini minimuma endirmək üçün hüceyrələri yumşaq şəkildə parçaladı. Sərbəst buraxılan DNT-nin çökməsinə və membranlara yapışmasına icazə verildi. Membran üzərinə həssas bir film qoyuldu və radiasiyanın filmi ifşa etməsi üçün vaxt verildi. Cairns avtoradioqrafları hazırladıqdan sonra nəticələri elektron mikroskopda araşdırdı. O, avtoradioqraflarda gümüş dənələrinin izlərini gördü (köhnə dəbli fotoqrafiyada plyonkada təsvir yaradan eyni növ gümüş dənələri). Onun iki rəsminə baxın avtoradioqraflar növbəti səhifədə.

Cairns adətən üç mümkün qapalı döngədən və ya dairədən ibarət olan &ldquosilver&rdquo yollarının uzunluğunu ölçdü. Bu dairələrdən ikisinin çevrələri həmişə bərabər idi, onların uzunluğu tək, bölünməyən hüceyrənin DNT tərkibi ilə yaxından proqnozlaşdırılırdı. Buna görə də Cairns bu görüntüləri replikasiya prosesində bakterial DNT kimi şərh etdi. Cairns-in avtoradioqrafları və onu bakterial dairəvi xromosomların şəkillərinə baxdığı qənaətinə gətirən ölçmələr aşağıda göstərilmişdir.

O, öz fikrini bildirmək üçün avtoradioqraf şəkillərini ardıcıllıqla (aşağıda) yerləşdirdi.

Çünki təkrarlanan xromosomlar (qeyri-müəyyən!) Yunan hərfinə bənzəyirdi ( eta ), Cairns onları çağırdı teta şəkilləri. O, təkrarlamanın təkdən başladığı qənaətinə gəldi replikasiyanın mənşəyi bakterial xromosomda, dairə boyunca davam edərək tamamlanır.

David Prescott tərəfindən sonrakı təcrübələr nümayiş etdirdi iki istiqamətli replikasiya&hellip, bu replikasiya həqiqətən də replikasiyanın mənşəyindən başlamışdır, bundan sonra qoşa sarmal açılmış və hər iki istiqamətdə, mənşəyindən uzaqlaşaraq, əmələ gəlmişdir. iki təkrarlama çəngəl (aşağıda təsvir edilmişdir).

Bakterial hüceyrələr hər saatda (və ya daha az) bölünə bilər, bakterial DNT sintezinin sürəti saatda təxminən 2 X 106 baza cütü təşkil edir. Tipik bir eukaryotik hüceyrə nüvəsi bir bakteriyadan minlərlə dəfə çox DNT ehtiva edir və tipik eukaryotik hüceyrələr hər 15-20 saatda iki dəfə artır. Hətta kiçik bir xromosomda da bakteriyadan yüzlərlə, minlərlə dəfə çox DNT ola bilər. Məlum oldu ki, eukaryotik hüceyrələr DNT-lərini bakterial replikasiya sürətində ikiqat artıra bilməzlər! Eukaryotlar bu problemi daha sürətli replikasiya biokimyasını inkişaf etdirməklə deyil, DNT sintezinin hər iki istiqamətdə davam etdirdiyi çoxsaylı replikasiya mənşələrindən istifadə etməklə həll etdilər. Bu, çoxluğun yaranması ilə nəticələnir replikalar.

Hər bir replikon böyüyür və nəticədə aşağıdakı təsvirdə təklif olunan hər xətti xromosomun çoxunu təkrarlamaq üçün hər iki tərəfdə böyüyən digər replikonlarla qarşılaşır.

Replikasiya çəngəllərindəki biokimyəvi hadisələri ətraflı nəzərdən keçirməzdən əvvəl, DNT polimeraza fermentlərinin prosesdəki roluna nəzər salaq.


Yarı Konservativ Replikasiya

DNT replikasiyası tamamlandıqda, hər biri orijinaldan, şablondan, DNT molekulundan bir zəncir və DNT replikasiyası prosesi zamanı yeni sintez edilmiş bir zəncirdən ibarət iki eyni cüt zəncirli DNT dəsti var. Hər yeni DNT dəsti bir köhnə və bir yeni zəncirdən ibarət olduğundan, biz DNT-ni yarı konservativ olaraq təsvir edirik.

DNT replikasiyasının böyük icmalı üçün bu videoya baxın:


DNT Replikasiyası: Mənası, Modu və Mexanizmi | Hüceyrə biologiyası

Genetik material kimi fəaliyyət göstərən DNT-nin ən mühüm xüsusiyyətlərindən biri, idarə etdiyi irsi simvolların ötürülməsi üçün əsas təşkil edən özünün dəqiq surətlərini (avtokatalitik funksiya) yarada bilməsidir. Bu proses replikasiya adlanır.

DNT molekulunun təkrarlanması avtokatalitik funksiya meyarını yerinə yetirən iki eyni qız molekulunun yaranmasına səbəb olur. Hüceyrələrin bölünmə dövrü zamanı DNT tərkibinin ölçülməsi göstərir ki, DNT replikasiyası interfazanın müəyyən bir hissəsində - ‘S’ mərhələsində baş verir.

Hüceyrə hər dəfə bölünəndə - hüceyrə bölünməsindən bir qədər əvvəl, hüceyrənin DNT-si çoxalmalıdır ki, yeni yaranan iki hüceyrənin hər biri DNT-nin tam olaraq eyni tamamlayıcısını və buna görə də eyni gen dəstini - həm kəmiyyət, həm də keyfiyyətcə - qəbul etsin. valideyndə var.

DNT-nin təkrarlanması hər hüceyrə bölünməsi dövrü üçün bütün xromosomun bir dəfə təkrarlanmasına gətirib çıxarır. Nəticədə, hər bir xromosom sentromerlə birləşmiş bir cüt xromatid kimi mövcuddur və onlar anafaza zamanı bərabər şəkildə yeni yaranan qız hüceyrələrinə ayrılır. Beləliklə, həm kimyəvi təbiət, həm də oxşar hüceyrələrdəki DNT-nin ümumi miqdarı hər nəsildə sabit qalır.

DNT-nin replikasiya mexanizmi DNT-nin Watson-Crick modelində tam aydındır. DNT-nin iki zənciri hidrogen bağları ilə birləşir. Hidrogen bağları iki zəncir qırıldıqda parçalanır və açılır. DNT-nin bir ucundan DNT-nin digər ucuna qədər başlayır.

Hər bir purin bazası hər bir əsas cütündəki partnyor pirimidin bazasından bir-bir ayrılır, lakin şəkər-fosfat onurğaları qırılmır. Fermuarın açılmasına çox bənzəyir. DNT-nin hər bir valideyn zənciri daha sonra öz üzərində tamamlayıcı yeni zəncirinin sintezi üçün şablon və ya qəlib rolunu oynayır və iki qızı eyni DNT cüt spiralını əmələ gətirir (Şəkil 20.1).

DNT replikasiya üsulları:

DNT replikasının üç mümkün rejimi var:

DNT replikasiyasının yarımkonser və şivativ rejimi (1953) Watson və Crick tərəfindən DNT-nin ikiqat sarmal modeli ilə birlikdə təklif edilmişdir. Burada DNT-nin replikasiyası əsas cütlər arasında hidrogen bağlarının parçalanması ilə DNT molekullarının iki zəncirinin tədricən ayrılmasını nəzərdə tutur.

Şablon kimi çıxış edən hər bir zəncir nüvə şirəsindən xammal alaraq, öz tamamlayıcı yeni telini öz üzərində sintez edir. Beləliklə, iki qız DNT spiral meydana gəlir. Hər qız DNT sarmalında bir köhnə və ya valideyn və bir yeni zəncir var.

Bu göstərir ki, hər bir qız DNT spiralında bir ana zəncir saxlanılır və onun tamamlayıcı zəncirinin yeni olduğu halda qorunur. Beləliklə, DNT replikasiyasının bu rejiminə uyğun olaraq, valideyn DNT-si hər yeni qız DNT molekulunda qismən qorunur. Beləliklə, DNT replikasiyasının bu üsulu yarımkonservativ replikasiya adlanır [Şəkil 2. 20.2(a)].

Yarıkonservativ Replikasiya üçün Eksperimental Sübutlar:

DNT replikasiyasının üç mümkün rejimi təklif olunsa da, DNT replikasiyasının yarıkonservativ üsulu geniş şəkildə qəbul edilmişdir. Bunu qəbul etmək üçün DNT-nin əslində bu şəkildə dublikat olduğunu müəyyən etmək üçün eksperimental sübut və ya sübuta ehtiyac var.

Eyni zamanda bir neçə başqa ehtimalı və utancaqlığı da istisna etmək lazımdır. DNT replikasiyası və şirkasiyası rejimini izah etmək üçün bir neçə eksperimental sübut təqdim edilmişdir, lakin bütün təcrübələrin nəticələri DNT replikasiyasının yarıkonservativ olduğunu qəti şəkildə sübut etmişdir.

Eksperimental sübutlar bunlardır:

(a) Meselson-Stahl Təcrübəsi

(b) Cairns's avtoradioqrafiya təcrübəsi və

a. Meselson-Stahl Təcrübəsi:

DNT-nin yarımkonservativ replikasiyası üçün eksperimental sübut ilk dəfə 1958-ci ildə Metyu Meselson və Franklin Stahl tərəfindən nümayiş etdirilmişdir. Onlar Escherichia coli bakteriyasının hüceyrələrini ammonium xlo&şirid şəklində 15 N (14 N-lik ağır izotop) olan mühitdə böyütmüşlər. NH4C1).

E. coli hüceyrələri 14 hüceyrə nəsli üçün böyüdüldü ki, hüceyrələr daha sonra DNT-yə daxil edilən əsasları sintez etmək üçün 15 N-dən istifadə etdilər. 15 N olan DNT, 14 N (1,710 qm/sm 2) ilə müqayisədə aşkar edilə bilən daha yüksək sıxlığa (1,724 qm/sm 2) malikdir.

Buna görə də onlar ağır və yüngül DNT adlanırlar. Ağır və yüngül DNT-ni tarazlıq sıxlığı gradient sentrifuqasiyası vasitəsilə asanlıqla ayırmaq olar, burada onlar sentrifuqa borusunda fərqli zolaq əmələ gətirirlər (Şəkil 20.3).

Sonra E. coli hüceyrələri subkulturasiya edildi və tərkibində normal 14 N olan mühitə yetişdirildi. Hüceyrənin normal 14 N olan mühitə köçürülməsi, sıfır, bir, iki, üç və s. hüceyrədən sonra hüceyrələrdən DNT-nin çıxarılması ilə davam etdi. nəsillər (bir hüceyrə nəsli bütün hüceyrələrin bir hüceyrə bölünməsinə məruz qaldığı vaxtı təmsil edir).

Hər bir hüceyrə nəslində çıxarılan DNT-lər sezium xlorid (CsCl) sıxlıq qradiyentində təhlil edilmişdir.

Hər iki zəncirdə 15 N olan DNT (ağır DNT) CsCl sıxlıq qradiyentində hər iki zəncirdə 14 N (yüngül DNT) ehtiva edəndən daha yüksək sıxlıq mövqeyində zolaq əmələ gətirir. 14 N mühitdə böyümənin bir nəslindən sonra DNT aralıq (hibrid DNT) sıxlığında birləşir.

Belə hibrid DNT-nin bir zəncirində 15 N, digərində isə 14 N var. 14 N mühitdə iki nəsil böyümədən sonra DNT zolaqlarının yarısı hibrid sıxlıqda, yarısı isə işıq sıxlığında görünür.

Qeyd etmək olar ki, mühafizəkar replikasiya rejiminə görə, bir nəsildən sonra heç bir interme­diate band görünməyəcək. Yalnız ağır və yüngül lentlər yaranacaqdı. Eynilə, dispersiv replikasiya rejimi eyni sıxlığa malik yalnız bir bandı düzəldə bilər. Heç bir işıq və ya ara zolaqlar yaranmayacaq.

Buna görə də, Meselson və Stahlın təcrübəsinin nəticəsi DNT replikasiyasının yarımkonservativ və utancaq rejimini aydın şəkildə izah edir, digər replikasiya rejiminin (konservativ və utancaq, dispersiv) gözləntiləri yerinə yetirilmir.

b. Cairns’ Replikasiya edən Bakterial Xromosomun Avtoradioqrafiyası:

Bakterial DNT-nin və ya xromosomun təkrarlanmasının yarıkonservativ rejimi də 1963-cü ildə J. Cairns tərəfindən fotoqrafiya emulsiyası ilə bakterial DNT-nin hazırlanmasında mövcud olan birləşdirilmiş radioaktiv izotopların aşkarlanması və lokallaşdırılması üçün avtoradioqrafiya adlanan texnologiyadan istifadə edərək demon və şistratlaşdırılmışdır. Avtoradioqrafiyadan istifadə edərək DNT-nin replikasiyası asanlıqla izlənilə bilər.

Təcrübə üçün Cairns, timidinin tritiated de-oksi-ribonukleozidini (3 H timidin) ehtiva edən mühitdə E. coli yetişdirdi. Timidin yalnız DNT-də olur. Hüceyrənin başqa heç bir əsas komponentində yoxdur.

Beləliklə, aydındır ki, bakterial DNT hüceyrə bölünməzdən əvvəl çoxaldıqda, 3 H timidini mühitdən hüceyrənin sitoplazmasına udacaq və nəhayət, yeni sintez olunan DNT-yə daxil olacaqdır. Mütəmadi fasilələrdən sonra Cairns E. coli hüceyrələrini topladı, DNT-ni pozmamaq üçün onları çox yumşaq bir şəkildə parçaladı və bütöv DNT-ni membran filtrlərində topladı.

Bu filtrlər şüşə slaydlara yapışdırıldı və sonra slaydlar β hissəciklərinə (tritiasiya edilmiş timidinin parçalanması zamanı buraxılan aşağı enerjili elektronlar) çox həssas olan foto emulsiya və ya filmlə örtüldü. Slaydlar kifayət qədər uzun müddət qaranlıqda saxlanılır.

Bu saxlama zamanı tritiated timidinin buraxdığı hissəciklər filmi ifşa etdi. Daha sonra filmlər E. coli DNT və ya xromosomunun avtoradioqraflarını görmək üçün hazırlanmışdır. Bu avtoradioqraf tritiated timidinin mövcud olduğu bölgələri və dolayısı ilə etiketli DNT-nin mövcudluğunu göstərdi.

Diaqramda (Şəkil 20.5) A və B döngələri 3 H timidində ikinci təkrarlamanı tamamladı və C döngəsi ikinci dəfə təkrarlanmalıdır. Cairn rəsm [şək. 20.5(a)] DNT-nin radioaktiv zəncirlərini bərk xətlər, radioaktiv olmayan zəncirləri isə kəsik xətlər kimi göstərir.

O da qeyd olunur ki, avtoradioqrafda B halqası iki radioaktiv zəncirlidir və yalnız bir radioaktiv zəncirlə A halqasının taxıl sıxlığını təxminən iki dəfə göstərir. X və Y replikasiya çəngəllərini, DNT sintezinin baş verdiyi budaqlanma nöqtəsini göstərir.

Tərkibində 3 H timin olan mühitdə böyüdülmüş dairəvi xromosom və utancaqlığın Cairns'in avtoradioqramı replikasiya gözlərinin və ya qabarcıqların varlığını göstərir. Bunlar sözdə ϴ strukturlar göstərir ki, dupleks DNT iki ana zəncirinin mütərəqqi ayrılması ilə təkrarlanır və onların tamamlayıcı zəncirlərinin sintezi ilə müşayiət olunur və iki yarı mühafizəkar dupleks qız zəncirini verir.

DNT replikasiyası daxildir ϴ strukturları kimi tanınır ϴ - təkrarlama. DNT molekulunun bir-birini tamamlayan iki zəncirinin ayrılması spiralın hər dönüşü üçün qoşa spiralın 360° fırlanmasını tələb edəcəkdir. Bu, xromosomda bir növ dönmənin olmasını zəruri edir.

Mövcud sübutlar göstərir ki, qoşa sarmalın bir zolağında bir fosfodiester bağının parçalanması və ya qırılması, açılmağa imkan verən fırlanma oxunu təmin edir. Cairns, yarımkonservativ replikasiyanın xromosom və ya DNT-də replikasiya mənşəyi adlandırdığı yerdə başladığını və E. coli-nin bütün DNT-si təkrarlanana qədər bir istiqamətdə davam etdiyini şərh etdi.

Amma hazırda məlumdur ki, DNT replikasiyası əslində bir istiqamətdə deyil, iki istiqamətli şəkildə gedir. DNT replikasiyası replikasiya mənşə nöqtəsindən hər iki istiqamətdə başlayır və hər iki Y-formalı struktur replikasiya çəngəlləridir, iki replikasiya çəngəlləri əks istiqamətdə - ardıcıl olaraq dairəvi DNT ətrafında hərəkət edir.

Ali bitkinin xro&şimosomunun təkrarlanmasının yarımkonservativ üsulunu da J.H. Taylor etal, avtoradioqrafiya texnikasından istifadə edərək Vicia faba kök ucu hüceyrələrində. Onlar müşahidə etmişlər ki, Vicia faba-nın tritiasiya olunmuş timidinlə işlənmiş kök ucları triti və timidinsiz mühitə köçürüldükdə, duplikasiyanın ilk generasiyasında hər iki xromatid la&şibelləşmişdir.

Duplikasiyanın ikinci nəsilində, hər bir xromosomda iki xromatiddən birinin etiketləndiyi, digərinin isə etiketsiz olduğu aşkar edildi. Üçüncü nəsil duplikasiyada, 50% xromosomlar bir etiketli və bir etiketsiz xromatiddən ibarət idi.

Taylorun təcrübəsi çox vacibdir, çünki o, daha yüksək bitkinin xromosomlarında təkrarlanmanın yarıkonservativ rejimini nümayiş etdirdi.

Bu mexanizmə görə, DNT-nin replikasiyası mühafizəkar ola bilər, bu o deməkdir ki, valideyn qoşa spiral tamamilə qorunub saxlanılır və toxunulmaz qalır və bir şəkildə yeni sintez edilmiş iki zəncirdən hazırlanmış qız cüt spiralının sintezini istiqamətləndirir [Şəkil 2. 20.2(b)],

Dispersiv replikasiyada köhnə və ya valideyn DNT molekulu bir neçə hissəyə parçalanır. Hər bir parça sonra təkrarlanır. Köhnə və yeni seqmentlər təsadüfi olaraq yenidən birləşərək bütün uzunluğu boyunca həm köhnə, həm də yeni seqmentlərə malik olan qız DNT molekullarını verir [Şəkil 2. 20.2(c)],

DNT Replikasiyasının Mexanizmi:

DNT replikasiyası çoxmərhələli kompleks prosesdir. O, tez-tez replikasiya aparatı və ya replisom adlanan çoxfermentli kompleks tərəfindən katalizlənir və bir neçə digər zülalın iştirakına ehtiyac duyur. DNT replikasiyası həmişə DNT-nin mənşə adlanan müəyyən unikal və sabit nöqtələrində başlayır.

Hər bir prokaryotik xromosomun bir mənşəli var, lakin hər bir eukaryotik xromosomun bir neçə mənşəyi var (məsələn, Drosophilanın nəhəng tüpürcək xromosomunda 7000 mənşə var), faq T.2 bir əsas və bir ikincil mənşəlidir. Birincili mənşənin mövcudluğunda, ikincili mənşəli qeyri-funksional və yorucu olaraq qalır. Lakin ilkin mənbə silindikdə, ikincil mənbə funksional mənbə kimi qəbul edilir.

Müxtəlif orqanizmlərlə aparılan tədqiqatlar göstərir ki, həm prokaryotlarda, həm də eukariotlarda DNT molekullarının təkrarlanması iki istiqamətlidir. Bununla belə, iki istiqamətli təkrarlama universal deyil. Koli-faqın xromosomu P2 lambda xromosomu kimi replikasiya zamanı dairəvi olur, unikal mənşədən bir istiqamətli təkrarlanır.

İki zəncirli DNT cavab vermir və utanmaz. Beləliklə, replikasiyadan əvvəl, DNT-nin iki zəncirini təkrarlama gözü və ya Y-şəkilli replikasiya çəngəl şəklində replikasiya mənşəli nöqtədən tədricən ayırmaq lazımdır.

Ayrılma zamanı DNT sintezi də adətən iki istiqamətli və ya nadir hallarda bir istiqamətli olur. DNT DNT-yə yönəldilmiş DNT polimeraza və ya sadəcə DNT polimeraza kimi tanınan fermentlər tərəfindən təkrarlanır. Bu ferment, qız tamamlayıcı zəncirinin sintezinin baş verdiyi şablon kimi sərbəst tək zəncirli DNT-dən istifadə edir.

DNT polimeraz aktivliyinin tələbini yerinə yetirmək üçün iki ferment və DNT helikaz tələb olunur. DNT girazı DNT zəncirlərinin bağlanmasını azaldır və DNT helikazı əvvəlcə mənşə nöqtələrinə bağlanır və onu tək zəncirli etmək üçün DNT ikiqat spiralının tamamlayıcı zəncirlərinin açılmasına səbəb olur.

Müəyyən zülallar - tək zəncirli bağlayıcı zülallar (SSBPs) - DNT-nin tək zəncirli təkrar zəncirinə sıx şəkildə bağlanır və DNT polimerazanın aktiv və utancaqlığı üçün lazım olan genişləndirilmiş tək zəncirli şablonları sabitləşdirməyə kömək edir. DNT dupleksində iki ana-paralel zəncir əks istiqamətdə hərəkət edir (biri 5′ → 3′, digəri isə 3’→5′)- Lakin iki ana zəncir müxtəlif yollarla təkrarlanır.

Qız DNT-nin sintezi hər iki valideyn zəncirində həmişə 5’→3′ istiqamətində gedir. Həm prokaryotik, həm də eukaryotik DNT-nin bütün məlum DNT polimerazaları DNT replikasiyasının başlaması üçün pulsuz 3'8242-OH qrupunun preeks və utancaq polinukleotidə, primerə (RNT və ya DNA, ancaq in vivo olaraq yalnız RNT istifadə olunur) və dörd deoksinukleozidin mütləq tələbinə malikdir. DNT-nin tikinti blokları olan trifosfatlar (dATP, dTTP, dGTP və dCTP).

Valideyn DNT-nin 3’→ 5′ şablon zəncirinin olması halında, DNT polimerazanın aktivliyi üçün birbaşa olaraq pulsuz 3′-OH qrupu mövcuddur. Beləliklə, replikasiya çəngəsi irəlilədikcə qızı DNT davamlı olaraq 5′ →3′ istiqamətində sintez olunur. DNT molekulunun digər valideyn şablon zəncirinin (5′ → 3′) replikasiyası fasiləsizdir. Bu (5′ → 3′) zəncirinin təkrarlanması 3′ → 5′ zəncirindən bir qədər gec başlayır.

Nəticə etibarilə, DNT molekulunun 5′ →3′ zəncirinin seqmenti (mənşəyə istinadla) həmişə 5′ → 3′ zəncirinin homoloji seqmentindən gec təkrarlanır. Buna görə də, DNT molekulunun 3’→ 5′ zəncirinə aparıcı zəncir, 5′ → 3′ zəncirinə isə geridə qalan zəncir deyilir.

Aparıcı zəncir davamlı olaraq sintez olunur və geridə qalan zəncir fasiləsiz olaraq sintez edilir və buna yarımfasiləli replikasiya deyilir.

Geridə qalan zəncirdə (5’→3′) sərbəst 3′-OH qrupu DNT polimerazanın aktivliyi üçün hazır deyil. Beləliklə, geridə qalan zəncir 10-60 nukleotidlik uzun RNT primerini transkripsiya edir (5′ →mənşəyində (gecikmiş ipin 3′ -> 5′ istiqamətində).

Bu primer RNT-nin 3′-OH geridə qalan zəncirinin replikasiyasını kataliz etmək üçün DNT polimerazının başlanğıc nöqtəsini təmin edir. Aydındır ki, geridə qalan ipin təkrarlanması replikasiya çəngəlindən mənşəyə doğru gedir, yəni onun istiqaməti aparıcı zəncirlə (mənşədən çəngəyə doğru) əksinədir. Bununla belə, yeni qız tel hər iki aparıcı tel halında 5′ → 3′-dən sintez olunur.

RNT primerlərinin sintezi primazlar adlanan xüsusi fermentlər sinfi tərəfindən kataliz edilir. Primaza aktivliyi primazanın və ən azı altı digər zülaldan ibarət kompleksin əmələ gəlməsini tələb edir - bu kompleksə "primo some" deyilir. Primaza əlavə olaraq, bəzilərində şərti olaraq i, n, n’ və n” zülalları və dnaB və DNAC genlərinin məhsulları kimi təyin olunan əvvəlcədən hazırlama zülalları var.

Primo-some qurğuşun və utancaq zəncir üçün ilkin astarlama reaksiyasını və geridə qalan ip üçün Okazaki fraqmentlərinin sintezinin təkrar astarlanmasını həyata keçirir. Okazaki fraqmentləri (Şəkil 20.7) onları ilk dəfə müəyyən edən R.Okazakinin adını daşıyır.

Geridə qalan ipin təkrarlanması fasiləsizdir, çünki o, bir neçə dəfə başlanmalıdır və hər dəfə bir Okazaki fraqmenti istehsal olunur. Okazaki fraqmentləri E. coli-də təxminən 1000-2000 nu&şikleotid uzunluğunda DNT fraqmentləri, eukariotlarda isə cəmi 100-200 nukleotid uzunluğunda DNT fraqmentləridir.

Prokaryotlarda aparıcı zəncirdə qız DNT-nin sintezi və geridə qalan zəncirdə Okazaki fraqmentlərinin sintezi DNT polimeraza III - yeddi müxtəlif polipeptiddən ibarət kompleks ferment - α, β, y, δ, ɛ, r, Q.

Geridə qalan zəncirdə Okazaki fraqmentləri prokaryotlarda DNT polimeraza I tərəfindən həzm olunan RNT primerləri ilə əlaqələndirilir. Bu ferment həm də yeni ipdə yaranan boşluqların doldurulmasını kataliz edir.

Okazaki fraqmentləri (DNT polimeraza I tərəfindən boşluq doldurulduqdan sonra) bitişik Okazaki fraqmentləri arasında fosfodiester bağlarının meydana gəlməsini kataliz edən DNT liqazı ilə birləşir. Beləliklə, geridə qalan valideyn zəncirində tam bir qız və şirniyyat DNT zəncirini meydana gətirir.

Yuxarıdakı təsvirdən qeyd olunur ki, DNT replikasiyası mənşədən bir istiqamətdə irəliləyir və eyni hadisələr mənşənin əks istiqamətində də baş verir. Həmçinin qeyd olunur ki, DNT molekulunun aparıcı zəncirinin (mənşəyinə istinadla) təkrarlanması davamlı, geridə qalan zəncirinin təkrarlanması isə fasiləsizdir.

Bu konsepsiya prokaryot və eukariot orqanizmləri üçün uyğundur və eyni zamanda hər bir mənşədə əmələ gələn hər iki replikasiya çəngəlinə də uyğundur.

DNT replikasiyasında iştirak edən fermentlər və zülallar:

DNT replikasiyası mürəkkəb bir prosesdir. Çox sayda ferment və zülal tələb edir.

DNT replikasiyasında iştirak edən əsas fermentlər və zülallar bunlardır:

i. Replikasiya çəngəlində DNT zəncirlərini ayıran helikazlar kimi tanınan fermentlər

iii. Çoxalmadan əvvəl onların reannealinginə mane olan zülallar

iv. RNT primerlərini sintez edən fermentlər

vi. RNT primerlərini çıxarmaq üçün bir ferment və

vii. Ardıcıl Okazaki fraqmentlərini kovalent şəkildə əlaqələndirən ferment.

DNT helikazları (DNT-dən asılı ATPazlar):

DNT sarmalları bir DNT dupleksini açmaq xüsusiyyətinə malikdir. Bu proses üçün ferment ATP-nin hidrolizindən əldə edilən enerjiyə ehtiyac duyur. Hər açılan nukleotiddə iki ATP molekulu hidroliz olunur.

Bu, hidrogen bağlarını qırmaq üçün 60 kJ enerjinin sərbəst buraxılmasını nəzərdə tutan DNT-nin açılması üçün ödəniləcək yüksək qiymətdir. Transkripsiyaya başlamaq üçün DNT helikazları da tələb olunur. E. coli-də yeddi spiral qismən səciyyələndirilmişdir - helikaz I, helikaz II, helikaz III və s.

İki zəncirli DNT ilə əlaqəli bütün sintetik fəaliyyətlər (transkripsiya, replika və s.) zəncirlərin ayrılmasını tələb edir. Bu o deməkdir ki, ikiqat zəncirli DNT sintetik fəaliyyət yerində iki tək zəncirli struktura çevrilməlidir.

Bununla belə, iki DNT zəncirinin sadəcə yan-yana yatması deyil, onlar küləklər arasıdır. Buna görə də onların ayrılması iplərin kosmosda bir-birinin ətrafında fırlanmasını tələb edir. Bu, DNT-də bir növ dönmənin olmasını zəruri edir.

Mövcud sübutlar onu da göstərir ki, keçici tək zəncirli kəsik (ikiqat sarmalın bir zolağında bir fosfodiester bağının qırılması) açılmağa imkan verən ox fırlanmasını təmin edir. DNT əslində sərbəst uçları olmayan qapalı bir quruluş kimi davranır.

Beləliklə, keçici bir tel kəsildikdən və kəsilmiş sərbəst ucdan istifadə edildikdən sonra bir tel digəri ətrafında fırlana bilər, bundan sonra qırılma düzəldilir. Belə reaksiya bir topoloji izomeri digərinə çevirir.

Topoloji izomerlər, kosmosda bir zəncirinin digəri üzərində kəsişmə sayı, əlaqə sayı fərqi istisna olmaqla, eyni olan DNT molekullarıdır. DNT topoizomerazları bu tip çevrilməni katalizləyir. Bəzi topoizomerazlar DNT-dən yalnız mənfi supercoilləri çıxara bilər, digərləri isə həm mənfi, həm də müsbət supercoilləri çıxara bilər.

İki növ topoizomeraz var:

Tip I ferment DNT-nin bir zəncirində keçici qırılma yaradaraq fəaliyyət göstərir.

II tip fermentlər keçici iki zəncirli qırılma təqdim etməklə fəaliyyət göstərir.

Ən yaxşı səciyyələndirilən I Tip topoizomeraz E. coli-nin üst A geninin məhsuludur ki, bu da yüksək dərəcədə mənfi superburulmuş DNT-ni rahatlaşdırır. Bu ferment müsbət supercoiled DNT fəaliyyət göstərmir.

Prokariotlarda topoizomeraz I DNT-yə bağlanır və o, DNT-nin bir zəncirinin bağlandığı və onun 5-fosfatının fermentdəki tirozin qalığı ilə kovalent şəkildə bağlandığı sabit kompleks əmələ gətirir. Eukaryotik ferment (topoizomeraz) 5'OH qrupu (polinukleotid kinazla fosforilləşə bilər) və fermentdə tirozinə bağlı olan 3'fosfat istehsal edir.

Tip I topoizomeraz əvvəlcə dupleks DNT-nin tək zəncirlərə ayrıldığı bir bölgəyə bağlanır, sonra bir zəncirini qırır və digər zəncirini qırıqdan çəkir və nəhayət, qırıqları bağlayır.

Topoisomerase Tip II ümumiyyətlə DNT-nin həm mənfi, həm də müsbət supercoillərini çıxarır. Reaksiya üçün ATP lazımdır. Bir ATP, ehtimal ki, bir DNT dupleksini digər dupleksdə edilən qırılmadan itələmək üçün lazım olan qüvvəni təmin edən konformasiya dəyişiklikləri vasitəsilə fermenti idarə etmək üçün istifadə üçün hidroliz edilir.

Topoizomeraz II reaksiyası, ehtimal ki, təyin edilmiş DNT duplekslərinin qeyri-spesifik tanınmasını təmsil edir.

Ferment bir dupleksdə ikiqat zəncir yaradır və qırılmamış dupleks qırılma sonundan keçir. Nəhayət, fasilə bağlanır və ferment DNT-ni buraxır. Bu şəkildə topoizomeraz II həm müsbət, həm də mənfi supercoilləri rahatlaşdırır.

Ən azı iki növ topoizomeraz II var. Eukaryotik fermentlər və bakteriofaq T-dən olan ferment4 supercoiled DNT-ni rahatlamağa qadirdirlər. Yəni onlar super qıvrılmış DNT-nin rahat, siklik dupleksə çevrilməsini kataliz edirlər.

Bakterial tip II topoizomerazlar DNT girazları kimi tanınır və onlar əlavə olaraq kovalent qapalı, rahat, siklik dupleks DNT molekullarına mənfi super spiral növbələr daxil edə bilirlər.

DNT-də mənfi super sarmalların meydana gəlməsini kataliz edən DNT girazları replikasiya üçün vacibdir və onların açılma prosesində əsas rol oynadığına inanılır. Arxebakteriyalarda topoizomeraz II-nin üçüncü növü haqqında məlumat verilmişdir. Bu tərs giraza rahat bir siklik DNT dupleksini müsbət superburulmuş molekula çevirə bilir.


Okazaki geri qalan ipi necə kəşf etdi? Təcrübə nə idi?

Beləliklə, təkrarlama zamanı aparıcı və geridə qalan bir ipin olduğunu başa düşürəm. Bəs geridə qalan ipi necə kəşf etdi, onun təcrübəsi və kəşfi nə idi?

Okazaki 1960-cı illərdə bu təcrübələri etməzdən əvvəl hamı hər iki ipin davamlı şəkildə təkrarlandığını güman edirdi (bir tel 3-dən 5-ə qədər, digəri isə 5-dən 3-ə qədər təkrarlanır). Ancaq hər kəsin tapa bildiyi yeganə DNT polimerazları 5-3 istiqamətində işləyirdi. Buna əsaslanaraq, Okazaki fərz etdi ki, 5-dən 3-ə qədər polimeraz hər iki ipin böyüməsinə cavabdehdir, ola bilsin ki, polimeraza vasitəsilə, sonradan birləşəcək geridə qalan zəncirdə qısa DNT uzantıları yaradır.

Bu fərziyyəni yoxlamaq üçün dozanı təyin etdilər E. coli with radioactively-labeled thymidine (the T of A, T, G, and C) for a very short time (a few seconds) - this would only label the DNA actively replicating during this short period. They then extracted all the DNA from the cells (denaturing the DNA during the process) and checked to see how big all of the radioactively labeled DNA strands were. Some of the radioactive label turned out to be in shorter, single-stranded DNA. They hypothesized that these short strands would then be joined together into a single strand by a recently discovered enzyme (ligase) that joins DNA strands together. (This is the first paper linked below)

They then tried the experiment again with special strains of E. coli that had a version of ligase that would not work at high temperatures. They did this experiment several different ways (This is the second paper linked below):

Labeling at high temperatures (Ligase off): They found lots of radioactively labeled short strands

Labeling at low temperatures (Ligase on): Most of the labeled DNA is in longer strands.

Labeling at high temperature followed by incubation at lower temperatures (Ligase off, then on again): The amount of short labeled DNA goes down as the E. coli spends more time at the lower temperature, while the amount of long labeled DNA goes up.

Labeling at low temperature followed by incubation at high temperature (Ligase on, then off): This experiment was designed to show that the high temperatures and the DNA extraction procedure were not causing the formation of short, radioactively-labeled fragments. The labeling pattern was largely the same as simply labeling at low temperature.

Sources: Here are some papers by Okazaki (These should be freely available, but let me know if that isn't the case)


Elongation: Lagging Strand

The lagging strand is much more difficult to visualize and understand. The lagging strand is DNA which is oriented in the 3’ to 5’ direction therefore DNA polymerase cannot just attach and run down the DNA strand. Replication of the lagging strand begins with DNA primase providing a short primer sequence on the template DNA, much like it does in the leading strand. Because it is not oriented 5’ to 3’, the lagging strand must replicate in fragments called Okazaki fragments. The fragments are synthesized away from the replication fork in fragments of about 100 to 200 base pairs long. DNA polymerase extends the primed sequence forming the fragments. The RNA fragments are removed by exonuclease activity (the DNA polymerase digests the RNA nucleotides) and the RNA is replaced by DNA. Finally, in order to put the Okazaki fragments together, another enzyme is needed. DNA ligase comes down the lagging strand and pushes the Okazaki fragments together to create a full strand of DNA. This type of DNA replication is considered discontinuous due to all of the fragments.

If you are having trouble visualizing this try to imagine DNA polymerase making a loop of the template DNA so that it can read it in the correct way (5’ to 3’) at the end of the loop it starts to read 3’ to 5’ again and must create a new loop. If this still seems difficult try checking out videos online like this one.

Because DNA is constantly being replicated, it is not unusual for mistakes in nucleotide placement to occur. To correct for this DNA polymerase has a subunit which proofreads the DNA as it moves down the strand. Any mutation in the DNA could cause a phenotypic change in the organism. It is essential for survival that mutations are limited.


Bruce Alberts

Bruce Alberts is currently the Chancellor’s Leadership Chair in Biochemistry and Biophysics for Science and Education at the University of California, San Francisco, and served as Editor-in-Chief of Science Magazine (2008-2013), President of the National Academy of Sciences (1993-2005), and United States Science Envoy (2009-2011). Alberts, who has dedicated his career to promoting science education and international… Continue Reading


Visual Connection


Question: You isolate a cell strain in which the joining of Okazaki fragments is impaired and suspect that a mutation has occurred in an enzyme found at the replication fork. Which enzyme is most likely to be mutated?


The replication fork moves at the rate of 1000 nucleotides per second. Topoisomerase prevents the over-winding of the DNA double helix ahead of the replication fork as the DNA is opening up it does so by causing temporary nicks in the DNA helix and then resealing it. Because DNA polymerase can only extend in the 5′ to 3′ direction, and because the DNA double helix is antiparallel, there is a slight problem at the replication fork. The two template DNA strands have opposing orientations: one strand is in the 5′ to 3′ direction and the other is oriented in the 3′ to 5′ direction. Only one new DNA strand, the one that is complementary to the 3′ to 5′ parental DNA strand, can be synthesized continuously towards the replication fork. This continuously synthesized strand is known as the leading strand . The other strand, complementary to the 5′ to 3′ parental DNA, is extended away from the replication fork, in small fragments known as Okazaki fragments , each requiring a primer to start the synthesis. New primer segments are laid down in the direction of the replication fork, but each pointing away from it. (Okazaki fragments are named after the Japanese scientist who first discovered them. The strand with the Okazaki fragments is known as the lagging strand .)

The leading strand can be extended from a single primer, whereas the lagging strand needs a new primer for each of the short Okazaki fragments. The overall direction of the lagging strand will be 3′ to 5′, and that of the leading strand 5′ to 3′. A protein called the sliding clamp holds the DNA polymerase in place as it continues to add nucleotides. The sliding clamp is a ring-shaped protein that binds to the DNA and holds the polymerase in place. As synthesis proceeds, the RNA primers are replaced by DNA. The primers are removed by the exonuclease activity of DNA pol I, which uses DNA behind the RNA as its own primer and fills in the gaps left by removal of the RNA nucleotides by the addition of DNA nucleotides. The nicks that remain between the newly synthesized DNA (that replaced the RNA primer) and the previously synthesized DNA are sealed by the enzyme DNA ligase , which catalyzes the formation of phosphodiester linkages between the 3′-OH end of one nucleotide and the 5′ phosphate end of the other fragment.

Once the chromosome has been completely replicated, the two DNA copies move into two different cells during cell division.

The process of DNA replication can be summarized as follows:

  1. DNA unwinds at the origin of replication.
  2. Helicase opens up the DNA-forming replication forks these are extended bidirectionally.
  3. Single-strand binding proteins coat the DNA around the replication fork to prevent rewinding of the DNA.
  4. Topoisomerase binds at the region ahead of the replication fork to prevent supercoiling.
  5. Primase synthesizes RNA primers complementary to the DNA strand.
  6. DNA polymerase III starts adding nucleotides to the 3′-OH end of the primer.
  7. Elongation of both the lagging and the leading strand continues.
  8. RNA primers are removed by exonuclease activity.
  9. Gaps are filled by DNA pol I by adding dNTPs.
  10. The gap between the two DNA fragments is sealed by DNA ligase, which helps in the formation of phosphodiester bonds.

(Figure) summarizes the enzymes involved in prokaryotic DNA replication and the functions of each.

Prokaryotic DNA Replication: Enzymes and Their Function
Enzyme/protein Specific Function
DNA pol I Removes RNA primer and replaces it with newly synthesized DNA
DNA pol III Main enzyme that adds nucleotides in the 5′-3′ direction
Helicase Opens the DNA helix by breaking hydrogen bonds between the nitrogenous bases
Ligase Seals the gaps between the Okazaki fragments to create one continuous DNA strand
Primase Synthesizes RNA primers needed to start replication
Sliding Clamp Helps to hold the DNA polymerase in place when nucleotides are being added
Topoisomerase Helps relieve the strain on DNA when unwinding by causing breaks, and then resealing the DNA
Single-strand binding proteins (SSB) Binds to single-stranded DNA to prevent DNA from rewinding back.


DNA structure and replication

Before cells may enter mitosis [or meiosis for that matter] they need to duplicate – replicate – their DNA. The process of replication occurs during ‘S’ phase of the cell cycle.

Review DNA structure:

Note: The video fails to highlight ALL the HL objectives.

DNA Replication:

How do we know about semi-conservative replciation? TOK

The meselson- stahl experiment was a brilliant example of creative science. Using cetrifugation, they were able to demonstrate the manner in which DNA is replicated.

IB expectations : SL

3.3 DNA structure (1) hour
3.3.1 Outline DNA nucleotide structure in terms of sugar (deoxyribose), base and phosphate. (2)
Chemical formulas and the purine/pyrimidine subdivision are not required. Simple shapes can be used to represent the component parts. Only the relative positions are required.
3.3.2 State the names of the four bases in DNA. (1)
3.3.3 Outline how DNA nucleotides are linked together by covalent bonds into a single strand. (2)
Only the relative positions are required.
3.3.4 Explain how a DNA double helix is formed using complementary base pairing and hydrogen bonds. (3)
3.3.5 Draw and label a simple diagram of the molecular structure of DNA. (1)
An extension of the diagram in 3.3.3 is sufficient to show the complementary base pairs of A–T and G–C, held together by hydrogen bonds and the sugar–phosphate backbones. The number of hydrogen bonds between pairs and details of purine/pyrimidines are not required. TOK: The story of the elucidation of the structure of DNA illustrates that cooperation and collaboration among scientists exists alongside competition between research groups. To what extent was Watson and Crick’s “discovery” of the three- dimensional structure of DNA dependent on the use of data generated by Rosalind Franklin, which was shared without her knowledge or consent?
3.4 DNA replication (1) hour
3.4.1 Explain DNA replication in terms of unwinding the double helix and separation of the strands by helicase, followed by formation of the new complementary strands by DNA polymerase. (3)
It is not necessary to mention that there is more than one DNA polymerase.
3.4.2 Explain the significance of complementary base pairing in the conservation of the base sequence of DNA. (3)
3.4.3 State that DNA replication is semi- conservative. (1)

IB Objectives: HL

7.1 DNA structure (2) hours
7.1.1 Describe the structure of DNA, including the antiparallel strands, 3’–5’ linkages and hydrogen bonding between purines and pyrimidines. (2)
Major and minor grooves, direction of the “twist”, alternative B and Z forms, and details of the dimensions are not required.
7.1.2 Outline the structure of nucleosomes. (2)
Limit this to the fact that a nucleosome consists of DNA wrapped around eight histone proteins and held together by another histone protein.
7.1.3 State that nucleosomes help to supercoil chromosomes and help to regulate transcription. (1)
7.2 DNA replication (2) hours
7.2.1 State that DNA replication occurs in a 5’ → 3’ direction. (1)
The 5’ end of the free DNA nucleotide is added to the 3’ end of the chain of nucleotides that is already synthesized.
7.2.2 Explain the process of DNA replication in prokaryotes, including the role of enzymes (helicase, DNA polymerase, RNA primase and DNA ligase), Okazaki fragments and deoxynucleoside triphosphates. (3)
The explanation of Okazaki fragments in relation to the direction of DNA polymerase III action is required. DNA polymerase III adds nucleotides in the 5’ → 3’ direction. DNA polymerase I excises the RNA primers and replaces them with DNA.
7.2.3 State that DNA replication is initiated at many points in eukaryotic chromosomes. (1)


Videoya baxın: EL OKAZAKI, LA CANCIÓN DEL VERANO (Sentyabr 2022).


Şərhlər:

  1. Bearacb

    İdeya sarsılır, dəstəkləyirəm.

  2. Reymundo

    Bu suala kömək üçün təşəkkür edirik.

  3. Teshura

    Nadir hallarda. Bu istisnanı deyə bilərik :)

  4. Darek

    Düşünürəm ki, artıq müzakirə olunub, forum axtarışından istifadə edin.

  5. Bernardo

    Üzr istəyirəm, amma mənə yaxınlaşmır.



Mesaj yazmaq